血细胞分析

血细胞分析（通用9篇）

篇1：血细胞分析

血细胞分析仪

1. 奥巴克斯(Abacus) ： Abacus、Abacus Junior

2. 雅培(Abbott) ： CELL-DYN1200、CELL-DYN 1500、CELL-DYN 1600、CELL-DYN 1700、CELL-DYN 3000、CELL-DYN 3200、CELL-DYN 3500、CELL-DYN 3700、CELL-DYN 1800

3. ABX ： Micros 60、Micros 45、Micros vit、Micros CRP、Pentra60、

Pentra120、Pentra80

4. 拜耳(Bayer) ： Advia 60、Advia 70、Advia 120、Advia 2120

5. 倍爱康(Biochem) ： Spirit

6. 百特(BT) ： 2100

7. Careside ： H

8. 库尔特(Coulter) ： Act diff / diff II、Gens、Md2、Maxm、Stks、Act

5Diff、HmX

9. 丹能(Danam) ： Excell 18、Excell 22

10. Hema ： Screen 18、Star II、Star III、Hs Compact

11. HL ： 2200、2400

12. 法国Hycel ： Celly、Hemacell、Diana5

13. MC ： 1200、1200-2

14.日本 光电(Mek) ：Mek -5216K、Mek -6108K、Mek -6318K、Mek -8118K、Mek -7222

15. Medicon ： 4000

16. 麦道尼克 (Medonic) ： CA530、CA570

17. Melet ： Ms4、Ms9、MS9-3H、Ms4-5、Ms9-3

18. 深圳迈瑞(Mindray) ： Bc2000、Bc3000、Bc1800、Bc2200、Bc2800、Bc3200、Bc2300、Bc5500、Bc2600、Bc2900、Bc5100、Bc5500、Bc2100、Bc5380

19. 日本东亚(Sysmex) ： F800、F820、K4500、Kx21、Poch-100i、Sf3000、Kx21N、Poch-80i、Xt1800i、Xt200i、Xs800i、Xs1000i

20. Swelab ： Ac900Eo、Ac920Eo、Ac970Eo、Ac900Eo+、Ac920Eo+、Ac970Eo+

21. 日本CIS ： F820、 FC-717、CA-800、FC-1000

22. 上海三科 ： JXJ402

23. 吉泰(G.TEC) ： CA-800、Ermax-18

24. 华亮： HA-618

25.深圳康尔特： KET-

26. 上海宁星： Mythic 18

27. 山东兰桥(Lanqiao)： CA-500、CA-900、CA980

28.桂林 优利特(Uritest)： 3000、3100

29. 特康(Tecom)： Tek-II Mini、Tek3600、Tek-5000、Tek-II pius、Tek（五分类）

30. 爱尔玛(Erma)：GT-1200

31. 深圳美思康(Maxcom)： MC-600、MC-6200，MC-6500（三分类，自动进样）

32. 雷杜： RT-7600

33. 深圳桑瑞： KEK X0860

34. 深圳普康(Procan)： PE6000、PE6300、PE6800

2. 35.南昌百特（HL）：HL-1300plus、HL-2400plus、HL-3325plus/3325、HL-

3124plus/3124、HL-3125plus/3125、HL-6505 （五分类）

篇2：血细胞分析

1.有无白细胞分类结果.血细胞分析无分类结果必须显微镜检查,且要给出白细胞形态和分类计数结果.2.超出白细胞计数上限和下限 WBC<2.5*109

WBC>25*109

3.白细胞自动分类结果超出检验结果上限和下限

1）五分类：MON>15%,EOS>15%,BASO>3%,LYM>60%(成人)>80%(儿童),NEU>85% 2）三分类：MON>10%, LYM>60%(成人)>80%(儿童),NEU>85% 4.仪器分析结果是否有报警提示.1)大血小板、小血小板凝集，小红细胞、红细胞碎片、有核红细胞、异形淋巴细胞、幼稚细胞。2)计数结果后有“*”号提示。3)血小板后有“*”号提示。5.血红蛋白MCV、RDW异常。Hb<70g/L,MCV或RDW严重异常。

6.血小板数量减少，PLT<80*109/L,确定假性血小板减少。

7.同一病人近日WBC总数变化情况，3天内WBC总数差>5.0*109/L。8.同一病人上一次分类计数时间，24小时内不必再计数。9.医生申请要求镜检的标本。

篇3：血细胞分析前质量控制分析

关键词：血细胞,分析,质量控制

临床血细胞分析前质量控制直接影响血细胞检测结果的准确性。近几年质量控制的实验证明分析前的误差约为46%~63%[1], 对血细胞分析前质量控制非常重要, 现报道如下。

1 血细胞分析前质量控制的要求

1.1 检验人员要求

选择高素质的专业技术人员, 上机前应经严格的有关仪器的培训, 仔细阅读说明书, 对血细胞分析仪的原理、操作规程、使用注意事项、细胞分布直方图、散点图的意义、异常报警的含义、一般故障的解除、仪器保养维护及引起实验误差的因素有充分的了解, 掌握用NC-CLS推荐方法校准仪器每参的程序[2]。

1.2 仪器设备的状态

仪器安放在远离电磁干扰源、热源的位置;放置仪器的实验台要稳固, 仪器两边、后部和上面空出至少0.5m的空间, 以利于保养和使用, 后板和墙壁间至少留出0.2m, 以易于散热和清洗, 工作环境要清洁;防潮、防阳光直射, 通风条件好, 室内温度应维持在15~30℃, 最佳温度为25℃, 相对湿度为30%~85%[3];为了仪器安全和抗干扰, 仪器应用稳压器以净化电源为佳, 并连接符合标准的专用地线;仪器安装后或每次维修后, 必须对仪器的技术性能进行测试、校准和评价, 仪器的校准、验收或检修换零件后或临床使用半年后, 必须进行校准1次, 仪器校准是保证检测结果准确与否的关键步骤, 需高度重视。

1.3 标本采集前患者的准备

工作人员必需消除患者的焦虑心理, 使患者保持心情放松, 积极配合检查。患者的基本情况对检查结果均有影响, 应注意患者的性别、年龄、精神状态、标本采集时间等。患者在采血前必需保持平静状态, 避免剧烈运动, 采血前休息15min。在冬季采血时必需保证血液循环畅通;住院患者需在早晨卧床状态下采血;化疗患者需在化疗前采血。

1.4 标本的正确采集

血标本:全自动血细胞分析仪一般要求用抗凝的静脉血, 尽可能不用末梢血, 因末梢血误差较大, 重复性较差, 除少数不易抽取静脉血者, 如婴儿、大面积烧伤患者等。项目同时抽血时应用第一管作血常规标本[4]。容器:采血时最好采用真空采血系统, 如含EDTA-K2抗凝剂的一次性真空采血管, 抗凝血2ml。这种封闭式采血减少了溶血现象, 能有效保护血液的有效成分, 保证待检样本原始性状的完整性, 使检验结果更可靠;可使采集标本标准化, 又可进行质量控制, 减少交叉感染。抗凝剂:国际血液学标准委员会 (ICSH) 推荐EDTA-K2量用1.5~2.0mg/ml, 此抗凝剂对血细胞数目、大小及红细胞形态影响较小, 可抑制血小板聚集。标本采集完毕, 要立即充分混匀, 混匀次数、方式要基本保持一致, 标本在2h内检测完毕, 因白细胞形态在2h内是基本稳定的, 2h后粒细胞形态有变化, 故应先推制血片。检查完毕, 标本应室温保存, 不宜放冰箱, 因血小板不宜在低温下贮存, 否则会影响血小板计数 (PLT) 和血小板平均容积 (MPV) 值, 以备复查。

1.5 标本的正确处理

标本采集后应立即送检, 如不能及时送检或分析, 必需采取保存措施, 对于需推片分类的标本应及时推片, 应在4~8℃低温冰箱冷藏, 但低温保存应≤4h, 血小板不宜在低温下储存。保存条件非常重要, 不适当保存直接影响实验结果。分析前将标本恢复至室温, 并轻摇标本数次。标本应由检验人员或临床医护人员采集, 住院患者标本应有明确标记, 与医师申请单相符。标本运送要做到专人专送[5]。

1.6 分析前项目的正确选择

检验结果发挥临床价值的前提是项目的正确选择。医师必需说明血细胞检验的时间、目的、检验注意事项等。因患者采血服用药物对检验结果也有影响, 所以医师也应向患者说明。申请检验的临床医师与检验科必需进行信息的交流, 使每个检验项目的原理和临床意义得到更好的体现, 表现出诊断实验的特异性和灵敏性。通过优化检测项目使患者付出较低的费用, 获得较佳的结果。检验项目的选择必需按照“及时性、安全性、有效性、经济性”的原则来进行。

2 讨论

血细胞分析前的质量保证, 既能减少实验误差, 还能提高血细胞检验质量, 而影响检验结果的因素如下。

2.1 标本采集注意事项

采血部位皮肤应完整, 无烧伤、冻疮、水肿、炎性反应等。采血时如检测项目多, 要防止血小板发生聚集。止血带压迫时间不能过长, 最好不要>1min, 以避免淤血和血液浓缩。抽血时避免产生大量泡沫, 否则可能导致溶血。血液抽出后立即轻轻摇动, 使血液和抗凝剂混匀, 以防止血液凝固。血液检查的标本与抗凝剂比例要合适, 血液比例过高易在血浆中出现凝块, 阻塞血细胞的分析, 影响检验结果。血液比例过低, 抗凝剂相对过剩, 会引起血细胞形态的改变, 导致错误的检验结果。

2.2 生理因素对检验结果的影响

不能控制的生理因素有:性别、年龄、种族;能控制的有:药物、情绪、生活状态、食物等。血液中某些实验参考值也因年龄不同而有差异。新生儿白细胞较高, 在15~40岁, 男女的红细胞计数值和血红蛋白值不同, 女性一般低于男性。时间和状态的不同可使肾上腺激素分泌变化, 从而引起血细胞数量、质量和许多物质浓度的改变。白细胞在早晨较低, 下午较高;安静时较低, 运动时较高。脑力和体力劳动、日光照射、冷热水浴、严寒酷暑均可使白细胞升高, 剧痛和情绪激动也可使白细胞升高;吸烟者白细胞高于非吸烟者。

2.3 药物对检测结果的影响

药物直接参与检验反应, 激活或抑制检测反应, 颜色干扰等影响检测结果。几乎所有药物对检验结果均有影响。采血前停止药物的使用, 才能得到正确的结果。

综上所述, 血细胞检测结果的准确性对疾病的诊断、血细胞分析仪治疗和监测有直接影响, 因此必须严把质量关, 认真做好血细胞分析的各项质量控制工作。血细胞分析前的质量保证, 既能减少实验误差, 还能提高血细胞检验质量。

参考文献

[1] 卢长春, 庞淑芬, 孙秋影, 等.RhD (-) 冰冻红细胞产品的制备及质量控制方法的探讨[J].中国输血杂志, 2012, 25 (S1) :51.

[2] 杨泽.临床血细胞检验标本的质量控制研究[J].中外医疗, 2013, 32 (4) :190, 192.

[3] 张鸿伟, 段雷波.生物学变异质量规范在血细胞分析质量控制中应用的回顾分析[J].航空航天医学杂志, 2013, 24 (2) :139-142.

[4] 张伟莉.三分类血细胞分析仪质量控制的体会[J].疾病监测与控制, 2013, 7 (3) :177-178.

篇4：血细胞分析仪的校准及质控

【关键词】血细胞分析仪；校准；误差

全自动血细胞分析仪快速、方便、精确度高，是人工无法替代的阻抗法三分群。血液分析原理是溶血素破坏RBC后，根据白细胞体积大小通过计数通道时所产生的脉冲大小来对WBC进行分类计数。显微镜下计数WBC是在油镜下通过观察细胞大小、形态、染色质的结构特点，胞浆的着色特点，有无核仁等对白细胞进行分类。不同的仪器直方图是不同的，但只要是白细胞直方图出现R1、R2、R3报警，都要进行形态学复检。异常白细胞直方图只是让检验者粗略判别各类白细胞比例或有无明显异常细胞，进而进行形态学复查时注意这些变化的真正意义，而不能仅凭白细胞直方图的变化来进行诊断。血液分析仪只对典型的血液病做出提示性诊断，以便作进一步检查。如果使用不配套的试剂导致直方图不典型或对报警掌握不够，就会忽视血涂片造成漏检甚至误检。

1资料与方法

1.1样本来源：健康人及临床患者新鲜抗凝全血(EDTA-K2，抗凝真空负压采血管采集)。

1.2方法：仪器校准：用校准参考仪器MEK7222-K型血细胞分析仪之进口原装配套校准品对其进行校准，再在该仪器上将健康人新鲜抗凝全血连续测定11次，弃去第1次结果，计算其余10次各指标之均值作为新鲜血参考定值。用此定值新鲜血代替校准品对BC-5500及ABX-60两台血细胞分析仪进行校准(样本采集到校准完成4小时内结束)。

1.3比对试验：选取临床患者高、中、低值5份新鲜抗凝全血在上述校准后的各台仪器上与其他样本一同测定(测平行样取均值)。以MEK7222-K型血细胞分析仪所测结果为标准，分别计算BC-5500及ABX-60两台血细胞分析仪所测结果之偏差(CV%)。

2结果

用新鲜血校准的BC-5500、ABX-60两台血细胞分析仪之检测结果与校准参考仪器MEK7222-K分析仪之检测结果配对比较t检验，均为P＞0.05，表明差别无显著性意义；RDW最大CV值为3.8%，PLT最大CV值为6.9%，MPV最大CV值为14.6%，其余各项指标CV值均＜3.0%，五项基础指标之偏差均小于卫生部临检中心允许的可接受范围：WBC＜2.8%、RBC＜2.5%、HGB＜2.0%、HCT＜2.6%、PLT＜6.9%。

3讨论

血细胞分析是临床最常用的实验室检测指标，其结果的准确与否直接影响到多种疾病的诊疗。全自动血细胞分析仪由于计数准确，精密度高，操作简便、快速，因而发展迅速，已逐渐取代传统手工方法，成为临床实验室的主要检测手段。但由于生产血细胞分析仪的厂家多，各自使用的测定原理和方法不尽相同，导致其测定结果及参考范围有所差异。国内各医院使用不同厂家和型号的血细胞分析仪已成为普遍现象，致使分析结果呈现不同程度的差异，给临床跟踪观察与对比带来困难。

血细胞分析结果只有直接或間接地溯源至参考方法，才能保证检测结果的正确性和不同仪器间结果的可比性。血细胞分析仪校准品是权威部门认可的标准物质，只能用于与之配套的同一品牌型号的仪器，由于其价格昂贵、有效期短、进口入关手续复杂而不能及时获得等问题，使其难以在实验室推广。

所谓自动血细胞分析仪实际上就是一台比较器，它将实测数据与校准数据进行比较，继而得出检测标本的分析结果。由此可见，校准物在仪器测定结果的准确是否上起到决定性作用。最好的校准品是经ICSH推荐的参考方法定值的新鲜人体血液：①氰化高铁血红蛋白法测定血红蛋白(HGB)。②微量红细胞压积法测定红细胞比容(HCT)。微量计数板手工计数RBC和WBC。③相差显微镜计数血小板，该新鲜血适用于各种型号仪器的校准。有报道可购买一台性能最佳血细胞分析仪之配套校准品校准该仪器，再以该仪器作为校准参考仪器取得新鲜血各项参数用于其他多台仪器的校准。上述比对结果显示：用新鲜血校准的BC-5500及ABX-60两台血细胞分析仪与校准参考仪器MEK7222-K分析仪各参数间进行配对资料t检验，均为P＞0.05，表明差别无显著性意义；五项基础指标之CV值均小于卫生部临检中心允许的可接受范围：尤以WBC、RBC、HGB、HCT四项指标的符合性最好。因EDTA-K 2抗凝血中，血小板体积不稳定，随时间延长而增大，可能是导致PLT、MPV偏差较大的主要原因。

实验结果证明，用配套校准品校准一台性能最佳血细胞分析仪，再用新鲜血在该仪器上取得参数后去校准其他多台分析仪可取得满意结果，该方法既简便易行又经济实用。

参考文献

［1］彭明婷,谷小林,等.不同方法校准血液分析仪结果比较.中华检验医学杂志,2000,23(1):35-37.

［2］叶应妩,王毓三,申子瑜,等.全国临床检验操作规程.南京:东南出版社,2006:47-81.

［3］顾可梁,陈军浩,谷俊侠,等.医学实验诊断学进展.南京:东南大学出版社,2000:47-53.

［4］展风霞,王谦,杨晓静,等.新鲜全血代替效准物在多系列血液分析仪上的应用.临床检验杂志,2003,21(3):167.

［5］彭明婷,申子瑜,等.血细胞分析溯源体系的建立及有关问题的探讨.中华检验医学杂志,2004,27(3):132-133.

篇5：自动血细胞分析仪操作规程

首先开启仪器主机侧面板的电源开关，然后开电脑主机，仪器主机前面板状态指示灯变为橙绿闪烁，仪器主机初始化后开始自检，自检时仪器会自动灌注稀释液、清洗液及溶血剂，并清洗液路。自检完成后，仪器进入血液细胞分析窗口。

4.2本底测试

4.2.1放置洁净的空试管于采样针下，应确保采样针轻挨试管底部。在血液细胞分析窗口，点击“排液”图标，仪器通过采样针排出稀释液到试管中。

4.2.2在血液细胞分析窗口，点击“编号”图标，进入下一个编号操作，输入“0”，再点击“确定”按钮返回血液细胞分析窗口。（注意：仪器系统软件将本底测试的顺序号设定为0，试测试数据将不存储在仪器中，但禁止将血液样本的顺序号设定为0）。

4.2.3将盛有稀释液的试管放在采样针下，按仪器前面板的“RUN”键，待听到“滴”的一声后，方可移走试管。仪器开始自动计数、测量。

4.2.4计数过程中，在窗口的右下方有WBC、RBC的计数计时器，显示WBC、RBC的计数时间。当计数时间过长或过短时，仪器会发出故障报警，并给出报警提示。若出现报警提示，即参照说明第9章《故障处理》进行处理。

4.3质量控制

首次装机或在每天进行血液样本测试之前必须对仪器进行质控，具体参照说明第5章《质量控制》进行处理。

4．4标定

若本底测试，质控结果达不至要求，且某些参数漂移变化较大，则必须对仪器进行重新标定，具体参照说明第6章《标定》进行处理。

4．5血液样本的采集

4．5．1由于所有的临床样本、质控物、标定物均可能含有人血或人的血清，具有潜在的传染性，因此在处理这些物品时必须遵守已建立的实验室或临床操作规程，穿好工作服，戴好医用手套及安全眼镜。

4．5．2采血过程避孕必须干净、无污染，必须使用合格的抗凝剂。严禁剧烈摇动采血管。在室温下，静脉血只能保存4个小时，若在短时间内不能将血样处

理完毕，须将血样存放于2℃～8℃的冷藏室内保存。

4．5．3静脉血（全血）的采集

利用静脉穿刺采取静脉血，放于含有抗凝剂（EDTA-K2·2H2O）的干净试管内，抗凝剂能够保持红细胞、白细胞的形态不变，同时可抑制血小板聚集。轻轻摇动试管5-10次，将试管内的血液彻底摇匀。

4．5．4末梢血（预稀释）的采集

末梢血的采集一般采用局部穿刺法，典型的采集方法是从指端穿刺采集，采血管用20μL定容采血管。指端穿刺采集血液样本时，不能过分挤压穿刺部位，避免组织液混入血液，造成测试分析结果不准确。

4．6全血模式与预稀释模式的转换

4．6．1在电脑工作界面点击“全血”标识，屏幕上将弹出“转换到预稀释模式”，点击“是”，转换成“预稀释工作模式”，同时屏幕上的标识变成“稀释”标识。

4．7血样计数、分析 4．7．1预稀释模式

a）将洁净的空试管置于采样针下，在血细胞分析窗口，点击“排液”图标，仪器通过采样针排出稀释液到试管中。

b）试管移出，将20μL定容采血管内的血样迅速注入到准备好的盛有稀释液的试管中，并轻轻摇动试管，使血样与稀释液混匀。

c）将试管放于采样针下，应确保采样针轻挨试管底部。

d）按仪器前面板的“RUN”键，待听到“滴”的一声后，方可移走试管。e）仪器开始自动分析样本，请等待分析结果。4．7．2全血模式

a）轻轻摇动盛有标本的试管，血样充分混匀后，将试管置于采样针下。b)按仪器前面的“RUN”键，待听到“滴”的一声后，方可移走试管。c）仪器开始自动分析样本，请等待分析结果。

注意：在“预稀释”模式下，必要时可将剩余样本再进行一次计数。4．8样本资料的输入 4.8.1手工资料的输入

在血液细胞分析窗口，点击“资料”图标，弹出资料编辑窗口后，用鼠标点击需要输入项目的文本框并输入资料。资料输入完毕后，用点击“确定”按钮，仪器保存当前编号的资料并返回血液细胞分析窗口。

点击“下一个”按钮，可输入下一个编号的资料，这样就可以批量输入样本资料，然后批量样本测量。点击“取消”按钮，仪器取消本次输入的资料并返回血液细胞分析窗口。

注意：序号0是仪器本底测试的专用序号，在正式的血液标本测试时请勿输入此序号。

4．9测量结果分析、处理

仪器提供丰富、便捷的测量结果分析、处理功能。点击“图形”图标，可以修改分析结果。

点击“传输”图标，可以将当前样本数据传输到网络。

点击“记录”图标，可以将当前样本数据的分析报告，通过内置记录仪打印出来。

点击“打印”图标，可以将当前样本数据的分析报告或浏览历史详细的报告，通过外置打印机打印出来。

点击“报警音”图标，可以关闭故障的警报音，再次点可恢复报警音。点击“帮助”图标，可以进入帮助窗口，获得版本号等信息，点击“详细”按钮，进入帮助文件获得需要的帮助。

如果仪器分析所得到的参数的数值超过系统所设定的参数界限，仪器会用不同的颜色进行标记。

蓝色表示测试参数值低于系统设定的下限；红色表示测试参数值超过系统设定的上限。

如果计数时间低于系统内部设定的时间，则仪器会提示“WBC气泡”或“RBC气泡”，同时在检测结果前显示“B”。

如果计数时间高于系统内部设定的时间，则仪器会提示“WBC堵孔”或“RBC堵孔”，同时在检测结果前显示“C”。

当WBC直方图出现报警时，R1，R2，R3，R4，RM分别表示如下含义： *R1报警：提示淋巴细胞左侧区域异常，可能原因：RBC溶血不全、血小板凝

结、巨大血小板、疟原虫、有核红细胞、异常淋巴细胞、冷凝球蛋白及脂类克立等。

*R2报警：提示淋巴和单核细胞间区域异常，可能原因：异型淋巴细胞、异常淋巴细胞、姜细胞、嗜酸性粒细胞、嗜碱性粒细胞增多、原幼细胞等存在。

*R3报警：提示单核细胞与粒细胞之间区域异常，可能原因：有未成熟粒细胞、异常细胞和嗜酸性粒细胞存在。

*R4报警：提示粒细胞右侧区域异常，可能原因：粒细胞增多。

*RM报警：提示在白细胞的分区中，除以上区域外的多区存在异常，可能原因：以上多种原因共同存在。

当PLT的直方图出现异常时，其右侧会出现Pm报警提示，Pm报警的具体含义为：

*PM报警：提示血小板与红细胞交界处区域异常，可能原因：有血小板凝结、大血小板、小的红细胞、细胞碎片和纤维蛋白存在。

注意：若系统测试所得到的参数数值为“***”，表示本次测试数据为无效数据。（测试本底除外）

注意：当PLT直方图出现Pm报警时，参数PDW的测试值有可能为“***”。注意：当WBC的测试结果的数值小于0.5*109/L时，白细胞分类可能不准确，白细胞分类可能不准确，建议手工复查。

4．10报告输出

仪器提供内置热敏记录仪和外接打印机两种设备，可根据用户的需要配置。当血液样本分析完成后：

点击“传输”图标，可以将当前样本数据传输到网络。

点击“记录”图标，可以将当前样本数据的分析报告，通过内置记录仪打印出来。

点击“打印”图标，可以将当前样本数据的分析报告或浏览历史详细的报告，通过外置打印机打印出来。

当“自动打印”被选中：

若“记录仪”被选中，内置记录仪会自动打印出测试报告； 若“外接打印机”被选中，外接打印机会自动打印出测试报告；

若同时被选中，则记录仪和打印机可以同时输出报告。若“自动传输”被选中，仪器会自动将测试数据传输到网络。

记录仪、打印机、传输及测试报告的格式再“设置”窗口进行设置，具体设置方法、步骤请参考参照本说明书第4章《仪器设置》。

4．11分析结果修改

当操作者认为仪器的WBC、RBC、PLT浮动解表自动分类不能满足临床或实验室的特殊样本的分类需求，操作者可以根据临床或实验室的实际情况，采用人工移动分类界标进行WBC、RBC、PLT的调整。

注意：不必要或不正确的人工移动分类界标，可能导致不可信的分析结果。在用于临床前建议用镜检验证。

具体方法、步骤如下：

a）在血液细胞分析窗口，点击“图形”图标，此时WBC直方图被选中，其图形被红白相间的矩形框包围，点击屏幕下方的“参数”图标可以选择需要调整的WBC、RBC、PLT直方图参数。

b）确定要修改的直方图参数后，点击“分类”图标，选择需要调整的分类限，选中的分类限会由绿色虚线变为粉红色实线。

c）根据需要点击“左移”图标或“右移”图标，可分别向左或右移动选中的分类线，在直方图的左下方同时显示选中的分类线的数值，同时相应的检测结果也随着分类线的移动面变化。

d）调整完成后，点击“返回”图标，出现提示对话框，点击“取消”图标可以取消本次调整结果，点击“确定图标则存储本次调整结果。

4．12关机

a）在血液细胞分析窗口，点击屏幕右上角的“关机”图标，屏幕弹出关机窗口。

b）若关闭仪器，点击“是”。

c）仪器开始对液路进行保养、清洗，关机程序运行完毕后，仪器会自动退出系统，此时关闭仪器后面板的电源开关。

d）清理工作台并处理废液。

注意：禁止违规进行关机操作，否则将导致仪器性器性能和可靠性的降低。

5．支持性文件

篇6：1全血细胞减少病因分析论文

1 资料与方法

1.1 一般资料：选取我院201月～月诊治的126例初治全血细胞减少患者。其中男70例，女56例，年龄7～90岁。所有患者均经过血常规、骨髓细胞形态学、组化染色，部分患者经骨髓活检、血生化和其他检查明确诊断。

1.2 诊断标准：参照张之南等主编的《血液病诊断及疗效标准》[1]：至少2次血常规白细胞<4.0×109/L;血红蛋白(海平面)男性<120 g/L，女性(非妊娠)<110 g/L，孕妇<100 g/L，6～14岁儿童<120 g/L;血小板<100×109/L。

1.3 方法

1.3.1全血细胞计数：标本为抗凝全血，血液分析仪及配套试剂测定血常规，瑞特染色血涂片。

1.3.2骨髓细胞学检查：行骨髓穿刺及骨髓活检(多部位穿刺者包括胸骨穿刺)，制成厚薄均匀的骨髓涂片，瑞特-姬姆萨染色，行细胞形态学观察。同时进行铁染色及其他细胞化学染色，包括：过氧化物酶(POX)、特异性酯酶(CE)、非特异性酯酶(AE)、NaF抑制试验、糖原染色(PAS)。

1.3.3诊断：结合病史、体格检查、骨髓涂片、骨髓活检及其他相关检查确诊。

2 结果

126例全血细胞减少患者中，血液系统疾病102例(占80.95%)，非血液系统疾病24例(占19.05%)。血液系统疾病占前三位的分别是：再生障碍性贫血(AA)28例(占22.22%)，骨髓增生异常综合征(MDS)21例(占16.67%)，急性白血病(AL)15例(占11.90%)，其余38例血液系统疾病还有：巨幼细胞性贫血(MA)12例(占9.52%)，淋巴细胞增殖性疾病(LPD)7例(占5.56%)，多发性骨髓瘤(MM)6例(占4.76%)，骨髓纤维化(MF)4例(占3.17%)，噬血细胞增多症(HPS)3例(占2.38%)，急性造血停滞2例(占1.59%)，脾功能亢进2例(占1.59%)，缺铁性贫血(IDA)1例(占0.79%)，骨髓坏死1例(占0.79%)。非血液系统疾病有：感染(尤其病毒、真菌感染)6例，甲状腺功能亢进症5例，药物(干扰素、抗生素、抗疟药、抗结核药等)5例，结缔组织病(如系统性红斑狼疮等)4例，肝炎2例，骨髓转移癌2例。

3 讨论

全血细胞减少是多种病因在血液学检查时出现的一种共同表现。引起全血细胞减少的病因有血液系统疾病，也有非血液系统疾病，血液系统疾病占绝大部分，其中血液系统恶性疾病比良性疾病为多。在血液系统疾病中，占前三位的分别为：再生障碍性贫血(AA)、骨髓增生异常综合征(MDS)和急性白血病(AL)，这与朱传新等报道的相类似[2]。

AA在本组中所占比例最大，外周血三系均降低，骨髓多部位穿刺示增生低下或重度低下，而MDS和AL则多表现为骨髓增生活跃，但有一部分MDS和AL为骨髓低增生，有时很难从血常规区分，需要从骨髓细胞形态学检查，甚至骨髓活检等检查加以鉴别。

引起全血细胞减少的病因较多。AA是一组因化学、物理、生物因素及不明原因所致的造血功能衰竭综合征，骨髓增生低下或重度低下，造血细胞减少，而非造血细胞增多。MDS是一组起源于造血干细胞的.髓系肿瘤性疾病，其主要特征为骨髓病态造血，克隆性染色体异常，并有不同程度进展为白血病的危险性。白血病是一种起源于造血干/祖细胞的克隆性造血系统疾病，血涂片和骨髓涂片中可见白血病细胞[3]。本组中血液系统疾病除AA、MDS、AL外，尚有MA、LPD、MM、MF、HPS、急性造血停滞、脾亢、IDA、骨髓坏死。非血液系统疾病中有感染(尤其病毒、真菌感染)、甲状腺功能亢进症、药物、结缔组织病(如SLE)、肝炎、骨髓转移癌。需结合病史、体格检查及其他检查明确诊断。

单渊东等将全血细胞减少的原因分为4大类[3]：①造血系统的良性疾病;②造血系统的难治性疾病;③造血系统的恶性疾病;④非造血系统疾病。本组中列第一位的AA属于造血系统难治性疾病，列第二、第三位的分别是MDS、AL，属于造血系统的恶性疾病。此三类疾病患者共计64例，占50.79%，即一半以上。结合其他种类疾病，造血系统的恶性疾病占多数，造血系统的难治性疾病中的AA常见，而造血系统的良性疾病中的MA也较为多见。非造血系统疾病中的感染、甲状腺功能亢进症、药物(干扰素、抗生素、抗疟药、抗结核药等)以及结缔组织病等不容忽视。

全血细胞减少病因多样，有些患者症状不典型，易造成误诊、漏诊，应详细询问病史、全面体格检查，结合外周血细胞形态、骨髓细胞形态学检查，有时还需要骨髓活检，及其他实验室检查等辅助检查以明确诊断，从而进一步指导治疗。

4 参考文献

[1] 张之南,沈 悌.血液病诊断及疗效标准[M].第3版.北京:科学出版社,:1.

[2] 朱传新,周玉平.71例全血细胞减少症的病因分析[J].临床血液学杂志,,24(2):104.

篇7：检验科血液组血细胞分析质量目标

检测项目

WBC

RBC

Hb

Hct

PLT

WCV

MCH

MCHC 变异系数

≤4.0%

≤2.0%

≤2.0%

≤3.0%

≤8.0%

≤2.0%

≤2.0%

≤2.0%

行标批内精密度≤4.0%

≤2.0%

≤1.5%

≤3.0%

≤5%

≤2.0%

≤2.0%

≤2.5% 行标批间精密度≤6.0%

≤2.5%

≤2.0%

≤4.0%

≤8.0%

≤2.5%

≤2.5%

≤3.0%

卫生部临检中心室间质评允许最大误差

检测项目

WBC

RBC

Hb

Hct

PLT

WCV

MCH

MCHC 变异系数

≤15.0%

≤6.0%

≤6.0%

≤9.0%

≤20%

≤7.0%

≤7.0%

WS/T406-2012 5.3 批内精密度(最佳条件）

表4

批内精密度检测要求

检测项目

检测范围

变异系数

WBC

4.0×109/L—10.0×109/L

≤ 4.0% RBC

3.5×1012/L--5.5×1012/L

≤ 2.0% Hb

110g/L---160g/L

≤ 1.5% Hct

35%

---55%

≤ 3.0% PLT

100×109/L---300×109/L

≤ 5.0% MCV

80fl---100fl

≤ 2.0% MCH

27pg---34pg

≤ 2.0% MCHC

320PG---360PG

≤ 2.5% WS/T406-2012 5.4 批间精密度

表 5 日间精密度检测要求

检测项目

WBC

RBC

Hb

Hct

PLT

WCV

MCH

MCHC 变异系数

≤6.0%

≤2.5%

≤2.0%

≤4.0%

≤8.0%

≤2.5%

≤2.5%

≤3.0%

制定的依据2：

制定的依据3：累积标准差和变异系数

8.0%

篇8：血细胞分析仪校准系数变化分析

血细胞分析是临床最常用的检验项目之一, 检验科对血细胞分析仪依赖性越来越强, 其结果的准确性直接影响对患者的诊治。因此, 《医学实验室质量和能力认可准则 (ISO15189:2007) 》[1]和卫生部颁发的《医疗机构临床实验室管理办法》[2]两个文件, 要求对血细胞分析仪等设备进行校准。我院实验室自2008年购置了SYSMEX XT-1800i全自动血细胞分析仪后, 先后按照《血液分析仪校准规范化的建议》[3]和《血细胞分析的校准指南》[4]进行校准。本文介绍XT-1800i全自动血细胞分析仪2013年第1次校准的流程并对2008年~2013年共10次校准后各参数校准系数的变化进行回顾和分析, 供实验室工作人员了解仪器的状况。

1 材料与方法

1.1 仪器与试剂

日本SYSMEX公司生产的XT-1800i血细胞分析仪, 厂家配套试剂, 具有溯源性的SYSMEX校准物SCS-1000[5], 每6个月校准1次。质控品分别为e-check (for XT) 高、中、低3个水平。

1.2 方法

1.2.1 校准前的准备

执行仪器保养和功能检查, 检查校准环境条件 (18~25℃) , 运行空白计数, 确认仪器的背景计数、精密度及携带污染均在说明书规定的范围内。

1.2.2 XT-1800i手动模式

使用SYSMEX配套校准物SCS-1000, 校准白细胞 (WBC) 、红细胞 (RBC) 、血红蛋白 (Hb) 、平均红细胞体积 (MCV) 和血小板 (Pl T) 。

1.2.3 校准品的准备

(1) 从冰箱中取出2瓶SCS-1000, 放置30 min, 恢复室温 (18~25℃) 。

(2) 保持瓶子直立状态, 用双手轻轻搓动20 s, 然后将其颠倒后再搓动20 s以上。

(3) 轻轻来回倒转12次使其充分混合均匀, 确保所有细胞都已悬浮起来。

(4) 进行分析前在平面上静置15 s, 使泡沫散去。

(5) 将2管校准物合在一起, 混匀后再分装于2个管内, 其中一管用于校准物的检测, 另一管用于校准结果的验证。

1.2.4 校准物的检测

手动模式, 使用仪器维修菜单中模式选项的“质控血模式”, 连续测定11次, 第1次检测结果不用, 以防止携带污染。将第2~11次的各项检测结果记录于EXCEL表格中。计算均值、均值与校准物定值间的偏差 (偏差= (均值-定值) /定值×100%) 。其偏差与血细胞分析校准的判定标准 (表1) 数据进行比较, 再依据《血细胞分析的校准指南》[4]判定标准进行判定。2013年第1次校准发现Plt偏差>3.0%, 需要调整校准系数 (表2) , 其余项目校准系数不需调整。

1.2.5 校准结果的验证

将用于校准验证的校准物充分混匀, 在仪器上重复检测11次, 去除第1次结果, 计算第2次~11次检测结果的均值及均值与校准物定值间的偏差, 再次与表1中的数值对照。如各参数的差异全部≤第1列数值, 证明校准合格。如达不到要求, 须请维修人员进行检修。本次校准各参数的差异全部<第1列数据, 证明校准合格 (表3) 。

1.2.6 自动模式的校准

(1) 确认XT-1800i手动模式得到正确校准。

(2) 取新鲜血在手动模式状态下检测11次, 去除第1次结果, 计算第2次~11次检测结果的均值, 计算均值, 然后在自动模式下检测11次, 计算均值, 计算自动模式和手动模式的偏差, 自动模式和手动模式结果偏差须小于仪器规定允许范围[6], 否则校准自动进样模式系数, 再做实验确认。本次校准自动模式和手动模式的偏差符合仪器规定允许范围, 无需调整校准系数 (表4) 。

1.3 校准系数变化分析

对2008年~2013年共10次手动模式校准后各参数校准系数的变化进行回顾和分析, 见图1。

2 讨论

由表2~4检测结果及图1各次校准系数变化图可知, 血细胞分析仪使用一段时间后各参数会发生漂移, 应按照中华人民共和国卫生行业标准《血细胞分析仪的校准指南》要求, 每半年正确校准1次[7]。我院实验室每年都严格按照要求进行校准, 但目前实验室血细胞分析仪的校准主要依赖于仪器制造厂商工程师, 因此今后要求设备负责人应当努力掌握规范化的血细胞分析校准方法。

通过对校准系数的变化进行分析, 2008年第1次校准为仪器安装完毕后进行的, 发现WBC校准系数发生变化, 表明新安装的仪器由于搬运、安装及检测环境的变化, 其校准系数也会发生变化, 因此使用前必须进行校准。5年间, 除RBC校准系数未发生变化, 其余项目校准系数均发生过变化, 变化较大的为MCV, 说明仪器在长期使用过程中, 其校准系数发生了变化, 需要定期校准。本实验室使用具有溯源性的SCS-1000校准物校准XT-1800i, 使血细胞分析仪的检测结果更加准确, 也更有临床诊断价值[8,9]。

摘要：目的 介绍XT-1800i全自动血细胞分析仪的校准流程, 并对校准系数的变化进行回顾性分析, 以了解仪器的状态。方法 按照《血细胞分析校准指南》对血细胞分析仪进行校准, 分析了2008年2013年共10次校准后各参数的变化。结果 2013年第1次校准发现血小板 (Plt) 偏差>3.0%, 需要调整校准系数, 其余项目校准系数不需调整。5年间, 除红细胞 (RBC) 校准系数未发生变化, 其余项目校准系数均发生过变化, 变化较大的为平均红细胞体积 (MCV) 。结论 血细胞分析仪使用一段时间后各参数会发生漂移, 需要定期进行校准。

关键词：血细胞分析仪,校准品,校准系数,血细胞

参考文献

[1]中国合格评定国家认可委员会.医学实验室质量和能力认可准则 (ISO15189:2007) [S].

[2]中华人民共和国卫生部.医疗机构临床实验室管理办法[S].2006-02-27.

[3]丛玉隆.中华医学会检验分会血液学、体液学专家委员会.血液分析仪校准规范化的建议.血液学体液学检验与临床释疑[M].北京:人民军医出版社, 2004:294-298.

[4]WS/T 347-2011, 血细胞分析的校准指南[S].

[5]Kutzner M.Metrological traceability of values assigned to Sysmex SCS-1000 haematology calibrator[J].Sysmex J Inter, 2002, 12:49-55.

[6]杨春英, 谭群英, 罗卫江.HORIBA ABX Pentra DF120五分类血液分析仪校准实例[J].贵州医药, 2013, 37 (3) :252-253.

[7]李芳文, 钟兰君.甘肃省血细胞分析仪校准情况调查分析[J].甘肃中医学院学报, 2012, 29 (6) :100-101.

[8]Kutzner M, Rowan RM.Traceability of haematology results-an industry view[J].Sysmex J Inter, 2001, 11:1-7.

篇9：血细胞分析

[关键词] 全自动五分类血细胞分析仪；血小板计数；影响

[中图分类号] R446???[文献标识码] B???[文章编号] 2095-0616（2012）10-183-02

全自动五分类血细胞分析仪在临床上对血小板测定具有简便、快捷、精密度高、重复性好的优点，在我国各级医院检验科已广泛应用，但仪器原理为电阻抗法[1]，主要依靠细胞的体积大小进行分类计数，而无法识别细胞种类，因此，在临床检验工作中，可出现血小板计数偏低或增高的现象，与手工检查结果不符，计数值有较大差异，现就全自动五分类血细胞分析仪对血小板计数的影响因素进行探讨，现报道如下。

1?资料与方法

1.1?一般资料

选取笔者所在医院自2011年1～6月期间住院患者在使用全自动五分类血细胞分析仪进行血细胞分析，对血小板计数低于100×109/L的标本，进行手工计数复检，镜检发现血小板聚集成团，分布情况及计数明显不符者179例，其中男91例，女88例，年龄5～79岁，平均（49.9±5.5）岁。

1.2?仪器和试剂

仪器采用的LH 500型全自动五分类血细胞分析仪、溶血剂、五分类全血质控液均由美国库尔特贝克曼公司生产，稀释液、清洗液，EDTA-K2抗凝剂，血小板稀释液按《全国临床检验操作规程》配制[2]，瑞氏染液（美国珠海贝索科技有限公司）。

1.3?方法

1.3.1?仪器法?抽取2 mL静脉血，加入EDTA-K2抗凝管中，立即混匀，l h内上机检测。

1.3.2?手工法?抽取静脉血同时，立即从中取20 μL用许汝和法稀释液按《全国临床检验操作规程》[3]的操作进行血小板手工计数。

1.4?统计学处理

本组数据采用SPSS13.0统计学软件进行处理，计量单位采用（）表示，组间比较经x2检验，以P＜0.05为有统计学意义。

2?结果

179例患者经手工血细胞计数法检测平均血小板计数为（145.41±55.98）×109/L，,全自动五分类血细胞分析仪计数结果，出现假性降低102例，平均血小板计数（59.05±25.68）×109/L，假性增高77例，平均血小板计数（220.33±60.07）×109/L，均较手工法检测差异显著，具有统计学意义（P＜0.05）。

全自动五分类血细胞分析仪检测179患者白细胞计数为（8.22±2.25）×109/L，手工法检测白细胞计数为（8.33±2.34）×109/L，二者差异不大，无统计学意义（P＞0.05）。

3?讨论

血小板是血细胞中体积最小的细胞，在止血过程中有着重要作用，血小板检测是观察止血与凝血功能的重要指标之一，也是各类手术前必须检查的项目，由于血小板自身容易被破坏和易受到外界因素的干扰，因此准确测定血小板及其相关参数，是临床诊断疾病和疗效判断的关键。

全自动五分类血球计数仪血细胞计数和分类原理采用电阻抗法，即利用光电二极管将细胞悬液吸入微孔管，当血细胞通过微孔时，造成电阻升高产生相应大小的脉冲，仪器依据细胞大小而进行分类，但不能识别细胞种类，因此，当血小板出现凝集或细胞悬液中存有小红细胞及红细胞碎片时，均可造成仪器血小板计数出现假性降低或假性增高。

造成仪器血小板计数出现误差的主要因素如下。（1）检测标本自身因素：采血过程中过分的挤压，或标本没有与抗凝剂充分混匀等因素造成血小板凝集，是导致血小板计数不准确的首要因素[4]，常常导致计数结果偏低，且结果误差较大，出现该种情况必须重新采血进行二次检测；（2）溶血剂影响：溶血剂是血细胞分析仪检测的主要试剂，其作用为溶解红细胞，促使白细胞体积发生规律性变化，若溶血不完全，造成红细胞碎片冲洗不完全，导致血小板计数假性增高；（3）抗凝剂影响：EDTA-K2抗凝剂不影响血细胞的形态，并可抑制血小板的聚集，被国际血液标准委员会（ICSH）推荐作为血细胞分析仪检测首选抗凝剂[5]，但是，在日常工作中笔者发现EDTA-K2抗凝剂偶尔可引起血小板聚集，造成血小板计数假性降低，称为EDTA依赖性假性血小板减少，目前EDTA依赖性假性血小板减少的机制尚不清楚，可能与血小板表面隐匿某种特异性抗原

有关；此外，抗凝剂与血液标本的比例也可影响血小板计数，抗凝剂过少，悬液中出现微血块，堵塞微孔而影响检查结果，抗凝剂过多，会造成血小板肿胀、崩解而影响检查结果；（4）标本放置时间影响：使用全自动五分类血球计数仪进行血小板计数时，最佳时间为15～30 min[6]，若标本放置时间过长，会生成巨大血小板，而造成血小板计数减少；（5）试剂影响：检测试剂的质量直接影响血小板计数的准确性，原则上使用原装试剂或与仪器匹配的试剂，若试剂质量不高，与仪器不匹配、杂质较多或细菌污染均可使试剂空白增高，导致血小板计数结果增高；（6）疾病因素影响：地中海贫血或缺铁行贫血的患者，红细胞体积发生较大改变，多会出现小红细胞，由于仪器只识别细胞大小，因此当小红细胞被误吸入微孔，容易造成血小板计数出现假性增高；（7）其他因素影响：实验室环境如温度、湿度、清洁度、电磁波干扰等因素均会影响血小板计数结果。

综上所述，使用全自动五分类血细胞计数仪操作简便、快捷、精密度高、重复性好，但应注意血小板计数假性增高和假性减少，严格按照操作规程，准确判断误差原因，提高准确性。

[参考文献]

[1] 陈松楠.EDTA-K2诱导的血小板聚集对血细胞计数的影响[J].中国疗养医学，2009，18（8）：749-750.

[2] 刘健.抗凝剂对血小板及其参数检测结果的影响分析[J].国际医药卫生导报，2004，10（8）：64-65.

[3] Bragnani G，Bianconcini G，Brogna R，et a1.Pseudothrombocytopenia clinical comment on 37 cases[J]，Minerva Med，2001，92（1）：13-17.

[4] 马洁，吴德海，莫建坤，等.血细胞分析仪计数结果假性增高的原因分析及处理方法[J].实用医技杂志，2005，9（8）：583-584.

[5] 魯家才，程正江，姚欣.两种药物对EDTA依赖性血小板聚集的抑制作用[J].临床检验杂志，2004，22（3）：198-199.

[6] 肖景珠，赵慧斌，李峰，等.血细胞分析仪计数血小板的影响因素分析[J].临床检验杂志，2008，16（5）：309-310.