临床检验标本采集规范

2024-05-04

临床检验标本采集规范(精选6篇)

篇1:临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范

血常规检验标本 用EDTA-2K(EDTA-K22H2O)1.5~2.2mg/ml抗凝(EDTA抗凝管、紫色帽)采血。

.2 注意事项:

A 按抗凝管刻度准确采血至2ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡,以免造成溶血。C 采血后尽快送检(为保证结果准确,必须在2h内完成检测)。

红细胞沉降率(血沉、ESR)检验标本 静脉采集枸橼酸钠(109mmol/L,即32.06g/L)抗凝血(枸橼酸钠抗凝管、黑色帽)。2 注意事项:

A 单独采1管血,按抗凝管刻度准确采血至2ml(抗凝剂:全血=0.4:1.6)。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡。C 采血后尽快送检(为保证结果准确,必须在2h内完成检测)。

凝血检测(PT、APTT、Fbg、TT、D2-聚体)标本 静脉采集枸橼酸钠(109mmol/L,即32.06g/L;抗凝剂:全血=0.2:1.8)抗凝血(枸橼酸钠抗凝管、蓝色帽)。注意事项:

A 单独采1管血,按抗凝管刻度准确采血至2ml。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可有凝块。

C 采血后尽快送检(为保证结果准确,必须在2h内完成检测)。D 空腹采血(餐后脂血会影响检验结果)。

血型与交叉配合标本 用EDTA-2K(EDTA-K22H2O)1.5~2.2mg/ml抗凝(EDTA抗凝管、蓝色帽)采血。

.2 注意事项:

A 按抗凝管刻度采血至2~3ml。最好单独采血,便于标本保存。B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡,以免造成溶血。

五 血流变检查标本 用肝素钠抗凝管(肝素钠、绿色帽)2 注意事项:

A 按抗凝管刻度采血至4~5ml。

B 采血后立即上下颠倒混匀5~10次,不可用强力震荡,以免造成溶血。

尿液常规检查标本 住院病人尽量留取晨尿(安静状态下留取清晨第一次尿)。2 门急诊病人可留取随机尿,但结果受多种因素影响。尿液采集于洁净尿杯中,不可使用其它未经洗涤的器皿如药瓶、试剂瓶等。标本留取后尽快送检(为保证结果准确,必须在2h内完成检测)。

尿液特殊检查标本 尿液成分定量检查应根据检查目的选择并在检验科领取防腐剂。

A 尿爱迪氏计数或3h计数:甲醛(40%),5ml/L尿液;3h和12h尿沉渣计数的留尿时间分别为(5:30-8:30)和(20:00-次日8:00)。B 尿蛋白或尿糖定量:甲苯,5~20ml/L尿液。

C 尿17-羟、17-酮、肾上腺素、儿茶酚胺和尿钙等:浓盐酸,10ml/L尿液。2 尿稀释浓缩试验:试验日正常进餐,上午8点排尿弃去,没隔2h留尿一次,至晚上8点共六次标本;晚8点至次晨8点为夜尿,收集于一个容器中,分别标记时间后送检。

粪便常规检查标本 一般应为新鲜的自然排出的粪便3~5g,必要时可肛试子取出,但需注明。2 样品置于洁净容器中,最好用带盖塑料盒。

3粪便应选取含脓、血、粘液等异常成分进行检查。做隐血试验时,应嘱病人检查前3天禁食肉类、含动物血的食物。

浆膜腔积液检查标本 标本一般由临床医师无菌穿刺采取。送检标本量:常规检查、生化检查、细胞学检查各留取2ml;细菌学检查用无菌管采集标本,结核菌检查留取10ml。标本采集后必须立即送检,否则可因标本凝固、细胞变性等导致标本无法检测或结果不准确。用于细胞学检查时,可在标本中加适量EDTA抗凝,但还需留1管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性。

十临床化学检验标本 一般生化检查(肝功、肾功、血脂、血糖、免疫、电解质、心肌酶等)留取不抗凝血(红色帽、真空负压管),采血量视检查项目多少而定,一般为4~5ml。2 糖化血红蛋白需用EDTA抗凝管,操作规程同血常规标本。3 血钾检测标本须立即送检,2h内完成检测。4 空腹采血。如为餐后标本,应在申请单上注明。

十一

临床免疫检验及化学发光检验标本 一般免疫学检验(乙肝病毒、丙肝病毒、HIV、梅毒螺旋体、结核、自身免疫病等)和化学发光检验(各种激素、肿瘤标志物等)留取不抗凝血(红色帽、真空负压管),采血量视检查项目多少而定,一般为4~5ml。2 严格按生物安全有关规定采血。空腹采血。如为餐后标本,应在申请单上注明。

十二

微生物学检验标本 标本采集、运送、验收和处理注意事项 ① 标本采集

A 申请单标记必须清楚(姓名、性别、年龄、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等),以便实验室合理选用培养基。B 尽量在抗生素应用前采集标本。C 标本采集应严格执行无菌操作。

D 采集标本的容器必须经灭菌处理或使用一次性无菌专用容器。

② 标本运送

A 标本采集后尽快送微生物室。

B 标本采集后在室温下超过2h未送达实验室,视为不合格标本。③ 标本验收

A 实验室只能接受和处理合格标本。

B 实验室对不合格标本退回时,须注明原因,并及时与临床联系。2 微生物检验标本采集和处理

① 尿液标本采集和处理:通常留取晨起第一次尿液,及时送检,并保证2h内接种;不能及时送检时,标本应置冰箱保存,并于8h内送检。怀疑沙门氏菌感染时,应于发病2周左右采集标本;怀疑钩端螺旋体感染时,应于发病后2周左右采集标本。常用的标本采集方法如下:

A 中段尿采集法:成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部,再用灭菌水

冲洗尿道口,然后排尿弃去前段尿液,于带盖的无菌试管中留取中段尿液5~10ml。B 导尿法:用导尿管导取5~10ml尿液于无菌试管中;长期留置导尿管者应更换导尿 管留尿;留置导尿时,用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口,用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检,不可采集尿液收集袋中的尿液送检。

C 其它方法:膀胱穿刺或肾盂尿采集法须由临床医师采集。

② 粪便标本采集和处理

A 采集时间:腹泻患者处于急性期,尽量在用药前采集粪便;怀疑伤寒患者在发病两周以后采集粪便;怀疑霍乱时应立即采集粪便送检。

B 采集方法:一般患者,取新鲜粪便的黏液、脓血或絮状物等有意义成分2~3g或1~3ml,盛无菌容器内送检;难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿,可用直肠试子采集标本,再插入灭菌试管中送检。③ 痰及下呼吸道标本采集和处理

A 自然咳痰法:晨痰为佳;先嗽口,清洁牙齿和口腔;再用力咳出呼吸道深部的痰;痰量不得少于1ml;咳痰困难者可先做雾化处理。

B 小儿取痰法:用弯压舌板向后压舌,将试子深入咽部,小儿因压舌板刺激引起咳嗽,喷出的肺或气管分泌物粘在试子上送检。

C 支气管镜、支气管穿刺、支气管肺泡灌洗等采集法:由临床医师实施。④ 血液及骨髓培养标本

A 抗生素治疗前,严格无菌静脉采血8~10ml(儿童1~4ml);骨髓1~2ml。B 无菌注入专用培养瓶中送检。

C 如已用抗生素不能停用时,可在48h内分别于下次抗生素使用前,多次采集血液标本送检。

D 疑为心内膜炎时,为提高阳性检出率,可酌情不同部位、不同时间多次采血送检。⑤ 脑脊液培养标本

A 怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液,最好在抗生素使用前采集。B 无菌腰穿采集脑脊液1~2ml,立即送检。⑥ 穿刺液培养标本

A 包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。B 在抗生素使用前采集或在停用抗生素2~3天后采集。C 无菌穿刺采集,标本量不少于1ml。

D 为防标本凝固,可在无菌盛器中加入适量灭菌肝素。⑦ 胃液及胆汁培养

A 采集方法:抽取空腹胃液5ml,置无菌管内送检;胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁5ml,置无菌管内送检。B 标本采集后必须立即送检。⑧ 脓汁和病灶分泌物培养

A 标本采集前,先对病灶周围消毒,然后用无菌方法采取脓汁或病灶分泌物或组织。B 标本采集后立即置无菌管内送检。⑨ 眼、耳、鼻、咽试子分泌物培养标本 A 用无菌试子常规采集标本。

B 标本采集过程中应注意避免被粘膜上的正常菌群污染。C 标本采集后连同试子一起置无菌管内送检。⑩ 泌尿生殖道培养标本

A 尿道分泌物:清洗尿道后采取尿道溢出的脓性分泌物,或用无菌试子插入尿道2~4cm处轻轻转动后取出,置无菌试管中立即送检。

B 阴道、宫颈分泌物:通过阴道扩张器,用灭菌试子采取阴道口或宫颈管1~2cm处分泌物,置无菌试管中送检。

C 前列腺液:清洗尿道、冲洗膀胱后用前列腺按摩法采集前列腺液于无菌试管中,立即送检。

D 精液:受检者应5天以上未派精,清洗尿道后用手淫或体外排精法,射精于无菌试管中立即送检。

E 溃疡分泌物:灭菌生理盐水清洗患处,用无菌试子取其边缘或基底部的分泌物,置无菌试管中立即送检。⑾

烧伤感染培养标本

烧伤12h后用无菌棉试子采集标本;要注意从多个创面取样;烧伤严重感染时易发生败血症,创面取样的同时应采集血样送做血培养。

真菌感染培养标本

A 浅部真菌感染标本采集:皮癣者常规消毒皮肤,从皮损边缘刮取鳞屑,置无菌平皿中送检;皮肤溃疡则采集皮损周围脓汁或组织;毛发则采集其根部折断处,至少5~6根送检;指(趾)甲:消毒指(趾)甲并去掉其表面部分,取可疑病变部分,用刀片修成小薄片5~6片,置无菌容器中送检。B 深部真菌感染标本采集:

血液:无菌采血8~10ml,注入血培养瓶中,立即送检;如不能立刻送检时血培养瓶应放室温,但不可超过8h。

脑脊液:采样量不少于3ml,分别注入两支无菌试管中送检(一支做真菌培养和墨汁染色,一支做普通培养)。

呼吸道及泌尿生殖道标本:采集方法同普通培养。⒀

厌氧菌感染培养标本

A 标本采集:严格执行无菌操作,避免标本污染和与空气接触;用注射器抽取胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液或无菌手术抽取脓液;抽出液体标本后,要尽快排除注射器内的空气。

B 标本运送:标本采集后不得冰箱储存,必须尽快(半小时内)送检;标本运送可采用注射器(已驱氧)或含运送培养基的无氧小瓶或厌氧罐。

篇2:临床检验标本采集规范

— 分析前质量控制

检验工作分为检验前、检验、检验后三个部分,并不是单纯在检验科内部完成,因此三部分同等重要,但检验前工作最为困难、最难控制。何为“分析前质量控制”? 分析前阶段(检验前)

按时间顺序自医生申请至分析检验启动的过程,包括检验申请、患者准备和识别、原始样品采集、运送和实验室内传递。分析前质量控制是影响因素最多,也是最难的环节。它贯穿于医、技、护共同重视并密切配合的监控过程中。分析前质量控制已经成为保证检验结果准确的重要核心部分。

目前国内现状,60%的检验误差由分析前造成,其中

1、采集后未及时送检(35.5 %)

2、采集标本不规范(25.5 %)

3、标本不合格(17.5 %)

4、采集时间不对(16 %)

5、检测项目不必要的重复(5.5 %)

第一部分

现采集及运送标本存在主要问题

1.溶血(Hemolysis)

溶血造成的后果

溶血干扰多个项目检测,如细胞内容物释放入血导致检测值假性偏高:红细胞内钾含量是细胞外的50倍。同时,溶血后释放的血红蛋白引起血清颜色加深,或浊度增加,释放的内容物干扰反应,影响上机检测。

溶血常见升高或降低项目

溶血造成多项目升高或降低(1)升高↑:ALT,AST,TB,DB,TP,GGT,CREA,UA,CHOL,CK,CK-MB,LDH,HBDH,血钾,血镁,血氨,叶酸,PLT计数,RDW,红细胞渗透脆性。(2)降低↓:GLU, 血钠,血钙,维生素B12,RBC计数,Hct。(3)导致溶血全套中蔗糖溶血试验结果出现假阳性。

(4)导致ELISA法检测的血清学项目出现假阳性。包括:感染四项,TORCH,甲肝,EB病毒,结核抗体。

造成溶血的常见原因

① 静脉穿刺处消毒液(如碘伏或酒精)未干即开始采血,可造成溶血。② 采血时定位或进针不准确,针尖在静脉内探来探去,造成血肿和标本溶血。③ 抽血困难:

危重症病人,由于血容量不足,管腔塌陷、变细,血液流入负压管速度缓慢,采血时间延长造成溶血;或患者意识障碍,病患儿紧张不予配合,操作者往往长时间紧扎止血带,寻找穿刺点,并反复拍打穿刺部位,从而干扰血流速度和流向,造成局部血液浓缩或激活凝血系统造成标本溶血。另外,止血带扎在伤口、结痂、伤痕处也可造成溶血。④ 抽血器具不合格:

真空静脉采血器为真空负压管,负压过大或过小均会造成溶血。负压相对较大,血液流入负压管底速度过快过猛,造成红细胞相互撞击,导致红细胞破裂,标本溶血如负压不够、漏气或抗凝剂剂量不足,使血流缓慢、间断造成溶血。采血量不足管内仍存有真空而导致溶血。

⑤ 在标本混匀过程中,操作者用力过猛,血细胞破坏可致溶血;选择采血针头口径过小、血流不畅也易造成溶血。

2、标本凝固

我们所谓的“标本凝固”:指使用抗凝管采血后,仍出现肉眼可见的血凝块,或者显微镜下可见微小凝块。

标本凝固造成的后果

① 肉眼可见凝块:若需检测血浆,标本中肉眼可见凝块导致标本无法检测。

② 肉眼不可见微小凝块:标本中肉眼不可见微小凝块,主要影响血液学检查如血小板计数严重假性偏低,PT和APTT延长甚至无法检出,FIB含量减少甚至无法检出,血沉加快,血氨升高。

造成标本凝固的常见原因

① 抽血困难:危重症病人,或患者意识障碍,病患儿紧张不予配合,操作者往往长时间紧扎压脉带,寻找穿刺点,并反复拍打穿刺部位,造成局部血液浓缩或激活凝血系统造成标本肉眼不可见微小凝块。

② 采血血流不畅、采血后未充分混匀标本易造成血液凝固。

③ 新生儿、妊娠、肾病综合征患者大多处于高凝状态,如采血时间过长易造成血液凝固。

3.采血量不足

采血量不足的后果

① 对需要血清量较多的项目(如性激素、普通生化、甲状腺激素、感染四项),采血量不足导致申请项目无法完成或复查,特别是新生儿血液中血清量相对较少,必须足量采血。② 使用不含抗凝剂的真空采血管时,采血量少,管内负压残留易导致血细胞破碎,造成溶血,溶血后果如前所述。

③ 使用含有抗凝剂的采血管时,采血量不足,抗凝剂相对过量,对结果造成不同程度影响,如:凝血功能检查(蓝头管)采血量不足,导致PT和APTT延长;血沉检测(黑头管)采血量不足,导致血沉加快,且无法使用自动血沉仪进行检测。④ 血培养采血量不足,可能造成阳性率降低。

采血量不足的原因

① 儿童和婴幼儿采血难度大,很多时候需同时采集多管标本,迫于家属压力,导致未执行规范操作,采血量不足。

② 如采集者对各类检验所需采血量相关知识未系统学习,仅按经验执行,易导致采血量不足。

4.采血量过多

使用含有抗凝剂的采血管时,采血量过多,抗凝剂相对不足,血液中容易出现微凝血块影响检测,常见如:PLT明显降低;PT和APTT延长甚至无法测出;FIB降低;血沉加快。

采血量过多的原因

① 采血过程中,多管采血换管或拔针不及时。

② 某些采集者采血时未警惕输液后由于血循环量增加,压力增强,或对各类检验所需采血量相关知识未系统学习长期不更新,仅按经验执行,导致采血量过量。

5.采血管选择错误

采血管选择错误的后果

① 血常规检测

必须使用EDTA-K2抗凝管(紫头管)。如误用肝素抗凝管(绿头管),会导致白细胞聚集,计数偏低,更不利于白细胞分类;如误用分离胶黄头管,会导致血液凝固无法检测。

② 凝血功能检测

必须使用1:9枸橼酸钠抗凝管(蓝头管)。如误用1:4枸橼酸钠抗凝管(黑头管),EDTA-K2抗凝管(紫头管),肝素抗凝管(绿头管),可使PT和APTT显著延长。③ 生化常规项目

须采用血清作为测定标本(分离胶黄头管)。如误用EDTA-K2抗凝(紫头管)血用于检测,可使血钾升高数倍,并导致血钙、镁无法检测,ALP、CK 检测值偏低;如误用枸橼酸盐抗凝管(蓝头管或黑头管),可使AMY、CK、ALP等酶活性降低,测定值降低。④ 血沉检测

必须使用1:4枸橼酸钠抗凝管(黑头管)。如误用分离胶黄头管,血液凝固使检测值减慢。⑤ 溶血全套检测

必须同时使用肝素抗凝管(绿头管)和分离胶黄头管。如只抽一管,导致检测项目不完全。如使用其他抗凝剂,则影响红细胞渗透脆性结果无法检测。⑥ 血培养检测

血培养必须使用专用培养瓶。凭条码至检验科细菌室领取。注意:儿童请领取儿童专用培养瓶(粉红色头);成人请领取成人用培养瓶(蓝色头)

采血管选择错误的原因

如对各类检验所需采血管相关知识未系统学习长期不更新,仅按经验执行,易导致采血管选择错误。

6.标本储存和运送不当

(1)胆红素检测需避光运送,光照可导致胆红素分解使检测值降低。(2)电解质 检测需采样后立即送检,否则可能导致血钾升高。(3)血氨 检测需采集至满管,立即送检。

(4)大便常规和尿常规采样后需注意环境温度,并在1小时内送检。温度超过25℃须半小时内送检,否则易导致致病菌及细胞等有形成分破坏,杂菌生长。

(5)白带常规、细菌培养标本采集后立即保温送检,否则可能导致假阴性。(6)标本管过度振荡可造成溶血。

(7)样本管破裂或管盖不严标本溢出,造成生物安全隐患,标本无法检测。

标本储存和运送不当的原因

① 如对标本运送的知识从未进行系统学习以致长期忽视,或者直接交给未受过正常培训的工人,或家属运送则容易导致错误。

② 某些护理人员习惯一次性大批量运送各类标本,而运送工具或过小,或不符合生物安全要求,运送中的挤压、碰撞或颠簸直接对标本造成破坏或交叉污染。7.条码-标本 对应错误

条码信息为A病患,标本采集实为B病患,导致检验科出具错误结果,临床医生得到错误的提示,导致严重的后果,甚至是医疗事故。

第二部分 《临床采集手册》的使用

一.目的:正确采集标本,做好分析前质量控制,保证检验结果准确可靠。二.使用范围:该手册适用于临床护理人员采集标本。

三.职责:临床护理人员须熟知标本的采集、贮存和运送过程中涉及的技术要求和注意事项,保证实验结果准确可靠。四.临床样本采集及运送

(一)血液标本采集及运送

静脉采血流程:

① 患者准备→② 准备与信息核对→③ 选择静脉→④ 扎止血带→⑤ 消毒→⑥ 穿刺→⑦ 接真空管→⑧ 拔针和按压穿刺点→⑨ 废弃物处理

采血注意事项

1)使用压脉带来初步寻找血管时不能在一个局部绑紧超过1分钟。消毒完成后,切不能再用手指去摸找静脉,穿刺有困难者,摸找静脉后应该再消毒。

2)采血过程中,确保病人的手或穿刺的部位向下放,防止血液倒流或回流,避免输液同侧采血。

3)采集血培养标本,严格无菌操作避免污染,并采集足够量。4)避免采血操作不当引起的溶血、血液凝块:

5)如采血后发现抗凝管或采血量错误,切忌互相倾倒血液。

6)遇婴幼儿需要颈静脉穿刺时,注意动作轻巧。颈静脉穿刺要注意婴幼儿呼吸及表情,发现有异样改变,及时停止操作。颈静脉穿刺后切不能用力按压穿刺孔。7)如有晕针、晕血病人,要注意安全,做好保护工作。8)血液标本采集后在规定时间内采用专用转运盒运输送检。

(二)尿标本采样及运送

1)将条码正确贴于容器侧面。

2)清洁标本采集部位:应用肥皂洗手、清洁外阴或尿道口及其周围皮肤。避免污染:应避免月经、阴道分泌物、包皮垢、粪便、清洁剂等各种物质污染,不能从尿布或便池内收集标本。

3)留取中段尿或导尿。

4)使用合格容器:不能用不清洁的或吸水的容器。

5)24小时尿液检查,需正确收集24小时内的全部尿液(如早上8点排尽尿液同时开始计时,收集至次日早上8点的24小时内的所有尿液,叮嘱患者次日早上8点必须排尿一次并计入24小时所有尿液中),由护理人员准确测量尿量并混匀后取尿杯半杯混合尿液送至检验科,如有需要在检验科指导下合理使用防腐剂。

6)常规尿液检查的标本量至少为20ml(尿杯半杯),其他尿液检查为10ml。7)尿常规检测在尿液标本采集后2小时内送检。

(三)粪便标本采集及运送

1)应取新鲜粪便,盛于洁净、干燥无吸水性的容器内,不得混有尿液、水或其它物质,不能使用尿布、纸张、棉签等吸水性材料包裹粪便。

2)采集标本应用干净竹签选取含有脓血、粘液、胨状等可疑病变成分处的粪便。外观无异常的粪便需从表面、深处及粪端多处取材,其量约为蚕豆大小(5g),稀水便留取2-3ml(一次性小便杯小半杯)。

3)粪便标本采集后 1h 内必须送检,查阿米巴滋养体时需立即送检。

五、检验科拒收标本准则

1、标识不准确

1)盛标本容器上无标识或标识不清

2)标本容器上标签或条形码与申请单上条形码信息不符 3)无申请单或申请单上信息不全

溶血全套条码易错

错误贴法

正确贴法

血培养贴条码时请勿覆盖瓶子本身条形码

2、标本不合格 1)中度以上溶血

2)抗凝血中有凝块

3)抽血量不足或过量

4)未使用合适的抗凝剂或标本类型不当。5)未按要求时间内送检 6)送检样本容器破损

结 束 语

篇3:临床检验标本采集规范

1 了解检验目的,区分标本类别

根据检验目的和试剂类别,临床上将血液标本常分为生化标本、血常规标本、免疫标本、PCR标本或血清标本、血浆标本。根据标本的不同类别,所用的采血试管亦有所不同,可分为普通采血管、抗凝管、促凝管等。有些检验只能用血浆标本,如凝血功能;有些化验既可用血清又可用血浆做标本,如血钾。因此护士采血标本时,要看清检验申请单的目的,根据检验要求选择相应的试管采血,避免漏抽、重抽、错抽。例如医生开出一张检验申请单,要求检验电解质、肝功能、乙肝两对半时,如果片面理解就要抽三管血(电解质、生化、免疫),实际上综合分析后,只需采集一管普通生化血就够了。又如,有一张体检申请单内容罗列很多:电解质、肾功能、肝功能、凝血功能、乙肝、丙肝、梅毒、艾滋病等,看似很复杂,其实只是比前一例多出一份凝血功能而已。因此在采集血液标本时,首先要看清检验申请单的要求,根据要求正确选择不同的采血管,准确地采集血标本,避免重复采血样、多采血样而增加患者的痛苦与不快,还可以减少不必要的浪费,降低医疗成本。

2 认真阅读检验申请单,根据申请单要求,准确抽取血液标本量

一般来说,普通人每毫升血液可离出0.45~0.5m L左右血清[1],但是对水肿患者或长期使用肾上腺皮质激素的患者,血液黏度比较高,血液离心后,血清含量相对减少,因此遇上此类患者要留心多抽吸一些血液,避免因标本量不够而重新采取血样,增加患者的痛苦与不快。足够的血液量是取得血标本的前提,因此一定要保证血液量充足。另外,工作中还要注意一些特殊需要的试管,如凝血功能、DIC、备(配)血必用凝血管且2m L定标,上不得>2m L,下不能<1.8m L;还有血常规管,有1m L、2m L定标,抽血时,一定要严格遵守剂量规定,否则会影响检验结果的准确性。例如:近年我院开展的血液流变检测,就要求比较严格:(1)试管要求用肝素抗凝;(2)剂量是必须在5m L;(3)必须充分混匀,不能凝血或溶血。三个条件缺一不可。

3 血液标本采集后及时送检

一般来说检验与采血时间关系紧密。在日常工作中,检验人员体会最深的是血清钾离子(K+)会随存放时间延长而升高,血糖(GLU)会随时间的延长而降低。前者因为细胞内的钾随时间延长由细胞内渗出到细胞外而引起血钾升高,后者由于时间长细菌分解代谢而导致血糖下降了。此外,实验证明,有26种生化检测项目随着存放时间的长短出现检验结果的变异,只有使用新鲜的标本,检验的结果才能真实地反映实际情况[2]。因此,血样采集后要尽快送检,血常规生化检测必须在1h内完成,以保证检验结果准确性。

4 履行告之义务,规范采集血液标本前患者的某些行为

4.1 饮食

生化检查,尤其是血糖、血脂、肝功能、血流量等受饮食影响较大,中度及重度高脂血患者免疫检查、分子学检测、凝血功能检验也有影响。因此采血前先告诉患者必须空腹12h,且前一餐清淡饮食,以清晨空腹为佳[2]。

4.2 运动

剧烈运动可加快机体有氧和无氧代谢,引起钾、钠、钙、肝功能、肾功能检验结果异常。因此,采血前询问患者有无剧烈运动,如参加运动会、球赛等,若有,采血最好在患者休息30min后进行,以免引起检验结果异常,导致误诊误治。

4.3 时间

血培养采血时间应选择患者高热、寒战时,未使用抗生素前或下次抗生素使用前,抽血7~10m L,采集双份标本,使用成人专用瓶,小儿瓶和树脂瓶(中和抗生素)。血培养阳性是确诊菌血症和败血症的重要依据,要提高血培养阳性率,快速准确地进行病原学诊断,就必须严格掌握采血时间[3]。临床诊断糖尿病糖耐量试验,要求必须是空腹、餐后1h、2h采集血液标本。心肌损伤标志物主要是肌红蛋白、肌钙蛋白和磷酸激酶,这3项指标发病时间各不相同,分别在发病2~4h、4~12h和6~9h,阳性率最高,因此采集前详细询问患者病情,根据不同检验要求把握采血时间,提高检验准确性。

5 加强学习,不断进步

苦练基本功,提高静脉穿刺成功率,避免溶血、凝血,保证采血标本质量。护士应与检验人员多沟通,加强合作,了解血标本的基本要求,熟悉影响血标本的因素,掌握血标本的保存方法等。

总之,血样标本从患者到护理,再到检验,中间环节多,流程长,需要处理好每一个环节,因此一个有价值的血液化验结果需要护理、检验、患者等多方面的密切配合。规范血液标本的采集程序,履行告知义务,保证高质量的血样标本,以提高检验结果的准确性,这是广大护理工作者应尽的义务。

参考文献

[1]寇丽筠.临床基础检验学[M].北京:人民卫生出版社,1996:3.

[2]陈芳建.血液标本保存时间对各生化检测指标的影响[J].检验医学,2006,21(1):87.

篇4:临床检验标本采集规范

doi:10.3969/j.issn.1007-614x.2012.09.258

在現代临床医学的诊断与治疗中,对于临床检验的依赖度越来越高,如果不能保证临床检验结果的准确性,将直接影响到临床诊治工作的效果。在临床检验中,血液标本采集是其基本项目之一,如果采集措施应用不当,检验结果的准确难以得到保障,甚至会导致重大医疗事故的发生。因此,为了确保临床检验质量,必须进一步规范血液标本的采集。

血液标本采集中常见问题与原因分析

血液标本稀释:血液标本稀释是指标本中的血浆、血细胞比例超出人体基础状态下的相关指标,影响的临床检验项目包括血常规、肝功能、血气分析、电解质、血糖等。血液标本稀释的原因为在采集血液标本前,患者输液、大量饮水,或者有抗凝剂的标本本量过少,而逐渐被抗凝剂所稀释。

血液标本溶血:在血液标本的采集、运送、分离与保存过程中,由于受到各种因素的影响,引发红细胞的体外破裂,导致血液标本中大量的细胞内物质流入血浆、血清中被稀释。血液标本出现溶血的问题,有可能对血电解质、血糖、尿酸、尿素氮、转氨酶等指标检测产生影响[1]。因此,在临床检验中,一旦发现溶血的问题,必须重新取血进行检验。血液标本溶血的原因为患者采血过程中,皮肤表面涂抹的消毒液未干;注射器、针头之间的连接处较松,而导致所采集血液中形成气泡;标本的采集量不足,而造成针管内出现血球破裂的现象。

血液标本凝固:血液标本凝固是指抗凝标本离体后,因受到自身血凝因子的作用,而出现血液标本凝集的现象。血液标本凝固的原因为采血的时间较长,部分患者的静脉充盈不理想;同一批次检测的试管太多,在进行血液标本的分装后才摇匀,导致血液凝固在注射器内;采血量较多,无法与抗凝剂充分接触。

规范血液标本采集,确保临床检验质量的措施

血液标本采集前的质量控制:在血液标本采集前,必须按照相关要求规范患者行为,以保证血液标本的采集质量。生活起居、生理状态、饮食状况、心理准备、病理变化、治疗措施等因素都有可能导致患者的生理指标发生变化,所以,在血液标本采集前,检验室护士必须在前一天通知患者做好相关准备,并且对患者的准备情况进行科学的评估。严格按照医嘱准备血液标本容器,并核对患者的医嘱与化验单,以确定临床检验的项目和注意事项。同时,按照血液标本的类型,选用相应的真空采血管,注意真空采血管的使用说明与有效期。

血液标本采集中的质量控制:①采集的时间:根据对于血液生化检验项目正常参考值的调查,一般以患者空腹血液标本的检测值作为统计标本,为了实现检验条件的基本一致,应合理确定血液标本的采集时间。除了特殊的临床检验项目外,血液标本的采集时间一般选在清晨早餐前或者进食12小时后。②采集的部位:在临床检验的血液标本采集中,对于正在输液、输血的患者,应采取侧肢体采血的方式,不能在输液通路中或同一血管、同一肢体进行血液标本的采集。对于接受常规临床检验的患者,则可以选取任意一侧的肢体进行血液样本的采集[2]。③采血操作环节:压脉带的舒服时间必须进行有效的控制,时间过程或过短都有可能影响到临床检验的结果;在对患者的采血部位进行消毒后,要等到消毒剂完全干燥后,方可进行血液标本的采集,否则将有可能发生血液标本溶血的现象;在患者的静脉穿刺采血过程中,尽量避免在同一部位多次进行静脉穿刺,以造成凝血、溶血等问题。在采血时应注意注射器漏气,以及注射器、试管、针头不干燥等问题,以防止血液标本中融入气泡,引起标本溶血的问题;混匀含有防凝剂的血液标本时,应注意力度适中,防止因用力过大而造成RBC的破坏;应注意采血量的准确性,使用全血、血浆进行检验的标本中,必须按照要求加入适量的抗凝剂,并及时混匀。

血液标本采集后质量控制:在血标本抽取后,应合理控制其放置时间,如果长时间放置将导致标本中的某些生化成分发生变化。如受到血液中白细胞降解作用的影响,以及红细胞自身的消耗能量,将导致血糖的浓度不同程度降低;红细胞中部分钾离子进入血清中,使得血清中的钾含量升高;血液标本的pH值变化等。因此,在血液标本采集后,必须及时进行运送与处理,特别是用于血气分析的血液标本,必须保证采血、运送、处理等过程在15分钟内完成,以保证临床检验结果的准确性与可靠性。

讨论

综上所述,血液标本采集是临床检验的重要环节之一,标本采集的过程是否规范,将对临床检验结果产生不同程度的影响。因此,在临床检验过程中,必须加强对于血液标本采集的规范化管理,并且在综合分析各种影响因素的基础上,制定严格的血液标本采集管理规范与制度,从而促进临床检验质量的不断提升。

参考文献

1 叶应妩,王毓三,申子瑜.全国临床检验操作规程[M].第3版.南京:东南大学出版社,2006:5-45.

2 李素珍,林福禧,沈波.人体位改变对32项生化指标影响的研究[J].中华检验医学杂志,2003,26(2):107-108.

篇5:临床检验标本采集规范

姓名_________

科室_________

成绩_________

一、单项选择题(每题2分,共60分)

1、静脉穿刺是实验室试验获取()样本的主要技术和方法 A.体液 B.血液 C.脑脊液 D.尿液

2、采血对象取坐位或卧位,手臂伸直平放在床边或台面,腕下垫枕上,暴露穿刺部位,找好合适采血静脉后,在静脉穿刺部位上方4-7厘米处扎紧压脉带,捆绑时间不应超过()A.1分 B.2分 C.3分 D.4分

3、采样前消除采样对象不必要的疑虑和恐惧心理,做好晕血晕针者的()。在采血过程中,与其谈话等尽量分散其注意力,随时观察其变化,一旦出现不良反应,立即采取相应的处理措施。A.思想工作 B.准备工作 C.心理护理 D.身体护理

4、采血后发生晕厥或眩晕,可让其()休息片刻,即可恢复,必要时可针刺(或拇指掐)人中及合谷等穴位;若因低血糖诱发眩晕,可立即静注葡萄糖或口服糖水即可,如有其它情况,应立即找医生共同处理。A.坐卧 B.斜卧 C.平卧 D.站立

5、对使用过的医疗用品严格按()规定处理

A.《医疗机构执业许可证》 B.《消毒产品生产企业卫生规范》 C.《预防性健康检查管理办法》 D.《医疗废弃物管理办法》

6、血标本采集时哪项不妥()

A.肝功能标本需饭后抽血 B.全血标本均需一针见血,充分混匀 C.检查项目的注意事项先告知病人 D.采集血培养标本时,应防污染

7、需生化试验应取真空采血管的()

A.红色或黄色 B.紫色 C.黑色 D.蓝色

8、凝血测定时取真空采血管的()

A.蓝色 B.红色 C.紫色 D.黑色

9、紫色的真空采血管是()

A.血常规 B.生化检测 C.凝血测定 D.红细胞沉降率

10、生化检验的血标本应在什么时候采集()

A.清晨空腹 B.餐前 30 分钟 C.餐后 2 小时 E.没有时间限制

11、以下哪项不是采集血标本的注意事项()

A.根据化验目的计算血量

B.生化标本应清晨空腹抽取

C.血清标本应防止溶血

D.女患者月经期不宜留取

12、以下说法正确的是()

A.若患者正在进行输液治疗,可在同侧肢体采血 B.应在安静状态下采集血标本

C.采血时尽可能延长止血带的结扎时间

D.标本采集后尽快送检,送检过程中可用力震荡

13、对于采血部位瘀斑青紫者,做好耐心细致的解释工作,嘱咐24小时内局部()、24小时后湿热毛巾热敷。A.热敷 B.按摩 C.冷敷 D.不处理

14、对于()样品应做好登记工作,确定复查时间

A.合格 B.所有 C.不合格 D.部分样品

15、下列哪项不属于标木采集的原则()

A.随时观察 B.充分准备 C.严格查对 D.定时送检

16、以下采血顺序哪项是正确的()

A.血培养→黄→红→兰→黑→绿→紫 B.紫→黄→红→兰→黑→绿→血培养 C.血培养→黄→红→绿→黑→兰→紫 D.黄→紫→红→绿→黑→兰→血培养

17、紫色管内抗凝剂成分为()

A.肝素钠 B.无抗凝剂 C.3.8%枸橼酸钠 D.EDTA-K2

18、绿色采血管不可用于下哪个检测项目()

A.电解质 B.生化检验 C.交叉合血 D.血常规

19、EDTA—K2中文是()

A.肝素 B.枸橼酸钠 C.乙二基四乙胺二钾 D.草酸钾 20、哪项不属采集标本前核对的内容()

A.申请项目 B.病员姓名 C.病员床号住院号 D.疾病诊断

21、静脉取血标本操作中哪项错误()

A.选好静脉系上止血带 B.严格消毒皮肤 C.稳准穿刺静脉、一针成功 D.松止血带后立即抽出血液

22、大便隐血标本检查前()禁食内类、肝、血、含大量叶绿素的食物及含铁剂药物 A.1天 B.2天 C.3天 D.4天

23、采集后标本应尽快送往实验室,生化和血常规项目的标本在采集后()内送往实验室。A.1小时 B.2小时 C.3小时 D.4小时

24、抽血至所需量,放松压脉带,用无菌棉签压住进针处拔针,将采样对象前臂屈曲压迫()A.1-2分钟 B.2-4分钟 C.3-5分钟 D.4-10分钟

25、使针与皮肤成(),在静脉上或旁侧刺入皮下,再沿静脉走向潜行刺入静脉,待回血后,将针头顺势探入少许固定不动,以免采血时针头滑出,但不可用力深刺,以免造成血肿。A.15度-30度 B.15-20度 C.20-30度 D.30-40度

26、以穿刺点为圆心,用复合碘伏棉签由内向外螺旋型涂抹()以上穿刺部位,消毒过的地方不能重复涂抹,在涂抹的过程中棉签必须也要同时旋转。如果手臂皮肤不足够干净的则需重新擦拭 A.2cm B.3cm C.4cm D.5cm

27、当轻压或轻拍时能感觉其回弹的静脉即为合适血管。最常用的选择部位是血管丰富并且血管贴近皮肤表层的()A.上臂区域 B.上肢区域 C.肘后区域 D.肘前区域

28、做尿妊娠试验时,需留何时尿标本获得准确结果()

A.晨尿 B.12 小时尿 D.上午 10 时尿 E.与时间无关

29、尿常规检查需何时留取尿标本()

A.饭前半小时 B.晨起第一次尿 C.24 小时尿 D.随时收集尿液 30、尿常规标本最好留取()

A.前段尿 B.中段尿 C.末段尿 D.以上均可

二、多项选择题(每题5分,共25分)

31、尿常规检查,留取晨尿的原因是()

A.未受饮食影响 B.尿液浓度高 C.尿液未变质 D.尿液不浑浊 E.促性腺激素含量高

32、采集标本的目的()

A.协助疾病的诊断 B.观察病情进展 C.制定治疗方案 D.减轻患者症状 E.观察用药效果

33、便隐血试验检查前三天禁食()

A.肉类 B.肝类、血类食物 C.豆制品 D.铁剂

34、作为标本采集者,保证检验结果准确性的措施有()

A、了解各种检验的目的,掌握正确采集方法B、严格执行查对制度C、遵守无菌技术操作原则及标准预防措施D、以上都不是

35、紫色管可以用于以下哪些检测()

A.生化检测 B.血常规 C.糖化血红蛋白 D.凝血 三.简答题(15分)

篇6:检验 标本 采集 手册

吉林大学第一医院检验科 2005 年 11 月

重要警示语

将每一份标本都看作是无法重新获得、将每一份标本都看作是无法重新获得、唯一的标 1 本,必须小心地:采集、保存、转运。必须小心地:采集、保存、转运。医学实验室都接受 ISO 15189:2003 的认可 CAP 文件分析前程序,ISO/IEC15189 文件定义为:按照时 间顺序,从临床医生开出医嘱开始,到分析检验程序 时终止检测结果报告发回的步骤,包括:检验申请、患者准备、原始样品采集、运送到实验室完成分析前 程序的主体: 大部分工作都是医生、护士、运输人员、检验人 员共同协调,在实验室检测以外的空间完成的。分析前质量管理最易出现问题: 临床反馈不满意的检验结果,60%报告最终可溯源 到标本质量不合要求。可靠的检验结果,第一个环节必须依赖于标本 的高质量。要获得高质量的标本: 临床医生:应主动明确地告之患者如何配合好 护理人员和检验人员:采集好、检测好标本 运输人员:及时快速规范转运好标本 在实验室进行检测、检验结果审核、报告数据发回。

一、采集标本前质量保证、对策 2

(一)加强沟通,合理选项 医生应认真、完整地填写检验申请单,讲清每项填写的意。特别是: 患者服药史、特殊病理变化、留取标本、送检标本的时间等。

(二)患者准备,至关重要 医护人员应了解在标本采集前影响结果的非病理性因素(药物、饮食、运动、治疗、生理变化、生活环境和习性、标本采集时间)正确指导患者,采取切实措 施,规范采集标本前患者的一切行为,保证采集的标本符合疾病的实际情况,留 取合格的标本。应告之患者:试验名称、所需标本类型、为什么要检测、检测报 告时间、如何获得结果。

(三)采集前准备: 条码生成与粘贴 足够合格的采血人员 标准化的采血程序手册 合格的采血器材 1 二.标本基本类别血液.全血、血浆、血清 尿液 便 脑脊液 心包、胸腔和腹腔积液 关节积液 羊水 胃及十二指肠液 前列腺液和精液 痰 其他(包括乳汁、泪液、房水、唾液、脓液和各种分泌物等)各种穿刺物 3 [血液标本的采集] 一.血液标本基本要求 保持标本完整性:控制各种干扰因素 保持标本新鲜:最好的尺度是时间 拒绝不合格血标本:高脂肪、溶血、凝固、二.标本采集的时间

(一)随机和急诊标本 随机和急诊标本是指无时间限定或无法规定时而必须采集的血和尿标本,一 般无法让患者进行准备。此类标本主要是门诊、急诊和抢救病人必须做的一些检 查标本,或在体内代谢相对较稳定的检查物质,或受体内外干扰较小的检查物质。凡此类标本在送检时应加以注明,评价检验结果时应注意昼夜节律影响。便于分 析检查结果时参考。

(二)空腹标本 空腹标本一般指进食 8h 后(但不能超过 12h,禁食时间过长可引起部分指标 异常;如补体 C3、转铁蛋白等。)采集的血和尿标本,住院病人多在清晨,此类 标本常用于临床生化定量检查。因为标本是在空腹和安静时采集的,所以受饮食 质、量以及日间生活、生理活动的影响较小。对病人来讲,若多次检查同一项目,也便于比较、对照。测定血肌酑时还应禁肉食 3 天,且不能饮咖啡、茶等。乳糜 血患者检测血脂应素食 3 天后。

(三)指定时间标本 指定时间标本多属功能试验采集的各种标本,因试验目的不同,采集标本的 时间各有不同,必须按试验要求采集,如葡萄糖耐量试验等。三.血液标本检验结果的干扰因素

(一)脂血 血液中脂蛋白成分的增加常会导致血清、血浆浑浊或奶酪状,通常称之为脂 血。血清或血浆浑浊本身具有一定的临床意义,实验室报告这一结果,同时血清 浑浊可导致许多指标出现假性升高(如总蛋白)。另处,由于指质可以置换水,经常导致血 K、Na 的的浓度在电极法测定时比火焰光度计法高。脂蛋白可以结 合亲脂成分,降低与抗体的结合,从而干扰免疫检测结果。4

(二)溶血 溶血的标本可以给测定值带来很大的影响,标本溶血后血细胞内含量高的物 质进入到血清可造成结果假性升高,同时溶血可干扰测定中的反应过程及比色,常会导致许多被测指标的浓度假性升高。

(三)黄疸 由于血清总胆红素含量太高干扰许多指标的测定结果。

(四)某些药物的影响 某些药物对测定结果的影响

是不容忽视的。药物的影响主要有(1)药物的 代谢产物对某些试验方法的物理或化学干扰;药物增加一些蛋白质的结合水平,从而影响这些物质的存在方式;药物自身与蛋白质结合。总之,正确全面了解药 物对测定结果的影响对检验医师和临床医师都是十分必要的,这对正确解释检验 结果有帮助的。

(五)巨酶 免疫球蛋白与酶的复合物被称之为巨酶,几存在于所有的诊断酶中,这些结 合可以提高酶的半寿期,从而导致酶的活性升高。最明显的例子就是 CK1 及 CK2,CK1 是 CK-BB 与免疫球蛋白的复合物,CK2 是线粒体 CK 的多聚物,巨 巨 这两种类型的巨 CK 均可使 CK-MB 活性上升。另一个例子是巨淀粉酶,它的显 著特征是使血中淀粉酶活性升高,而尿中淀粉酶则正常。

四、静脉采集基本要求

(一)患者体位 住院患者卧位。从卧位到直立位:则血浆量减少 12%。大多数细胞成分及大 分子物质有 5%-15%升高。不应在输液侧采血:如不可避免,必须注明。否则一 切后果采血者负责。试管准备:按检验条码要求准确备齐各种试管而不能混用

(二)血管选择 应选用较大的血管。血管小:采血时易发生塌陷,引起凝血。不能采到足 够的血量。

(三)注射器 针头外径 1mm。5 针头外径>1mm 可引起创伤,导致血管碎片入血,促发凝血。针头外径 <0.7mm 血液采集时间延长,针头内压力剃度可导致溶血和血小板激活。消毒部位:穿刺处所用消毒液已干

(四)止血带 压脉带控制在 1 min 内。一旦血液入针筒,就应去除。病人握拳:不能一握 一放。抽血过程:应缓慢,不宜过快,将血液沿管壁徐徐注入标本容器,以免产生 大量泡沫或溶血。保证血量:按条码要求选择采血容器颜色。避免抽血不当或血量不足。采血容器的颜色、用途和采血量 头盖颜色 紫色 蓝色 黑色 绿色 红色 黄色 添加剂 EDTA-K2 枸橼酸钠 枸橼酸钠 肝素 分离胶促凝 分离胶促凝 用途 采血量(ml)2.0 2.7 1.8 2.0 4.0 4.0 血常规、HLA-B27、心肌损伤标志物 凝血常规、等凝血试验 血沉 血流变学、D-D、FDP 生化检验 免疫检验

(五)采集多种血液标本的次序: NCCLS 推荐 1.多种血液标本时,采血次序为:血培养管、普通血清管、枸橼酸钠管、凝胶分离管/普通血清试管、肝素管/肝素凝胶分离管、EDTA 管、葡萄糖 检测管。2.同一患者采集多种试管,采血次序:EDTA 管、其他试管、凝血标本。3.试管混匀:抗凝血必须及时、充分、轻轻颠倒混匀血液和抗凝剂,至少 5 次以上。避免采血损伤和用力转入容器。

(六)抗凝血量

1、血液比例过高——由于抗凝剂相对不足,血浆中出现微血凝块。

2、血液比例过低——抗凝剂相对过剩,对很多检验会造成严重影响。

(七)记录标本信息:标本管上(条码)注明姓名、科别、床号等相关信息。6

(八)标明采血时间 从采血和离心之间的延误可导致试验结果的质量,因此,标明采血时间很重 要。

(九)生物安全 所有采集标本的器皿均应加塞密闭

(十)标本运输和储存 采血完成后,时间耽搁越少,检验结果的可靠性就越高。1.标本运输 温度:在运输到检验科前,标本必须置于室温下,标本转运必须符合储存 条件。ICSH建议:在室温(18~25℃)下,4h完成检测分离血浆和血清:血 细胞与血清或血浆接触>2h: 血浆或血清将浓缩、分析物被破坏。冷凝集试验、血氨、凝血项目检测立即送检。同一病人同时有数管血标本送检,应标明采血先后顺序,以便结果不一致 时可进行溯源运输必须平稳。泡沫可使蛋白质变性,血小板激活。试管置于专用试管架和有合适温度的容器转运。2.储存条件: 如不能及时检查,应放在室温、-4℃、-20℃、-80℃冰箱中保存。

(十一)避免标本溶血: 是保证标本质量的重要环节。应将溶血标本弃置并记录,重新采血。标本溶血常见原因:采血不熟练、劣质采血器和试管、注射器血急速注入 试管、试管混匀用力过猛、从已有血肿的静脉采血、采血量不足、穿刺处所用 消毒液未干、注射器和针头连接不紧采血时空气进入产生泡。肉眼未见溶血,但乳酸脱氢酶、血红素、转氨酶或钾等值异常增高时,应 警惕是否发生了非显性溶血。(十

二)血液浓缩原因: 使用压脉带时间过长 进针处按摩、挤压或摸索寻找 长期静脉治疗 7 硬化或阻塞的静脉

(十三)拒收标本标准

1、患者信息不全

2、标签不清,不具备识别系统的唯一性

3、抗凝不当、标本凝固

4、时间延误

5、溶血标本

6、储存温度不当

7、采自输

液管

8、样本外漏、容器破损

9、明显受污染的样本

10、标本量过少

11、标本项目与申请项目不符

12、医嘱作废的标本

13、容器不合格,影响检验结果

(十四)接受标本:必须认真核对标本

1、姓名

2、申请项目

3、标本类型

4、试管和抗凝剂合适性

5、标本是否泄漏或容器损坏

6、标本量是否足够

(十五)治疗药物浓度监测采样时间〕 1 氨基糖苷类抗生素:一般在用药结束后稍晚一点的时间开始,若滴注为 1h,在滴注结束后 10min 取血样,若滴注小于 1h,一般在给药 30 min 取样。

2、卡马西平:达稳态血药浓度时,给下一剂量前立即采样(谷值)。

3、苯巴比妥:由于半衰期长,采样时间不重要,可加固定在同一时间采样,以便比较。

4、丙戊酮:给下一剂量前立即采样(谷值)8

5、地高辛:给药后 8—24 小时。(不管是静脉给药还是口服给药,完成药物 的分布过程需要 8~12h.。

6、茶碱:口吸服后 2~4h。

7、奎尼丁:若每 6h 服药一次,则给药后 6h 左右取血;若每 8h 服药一次,则给药后 5~6h 左右取血。总之,应于下次给药前采血测谷浓度。

8、环孢霉素:服药后 12h。

9、必要时遵照医嘱。〔微生物标本的采集〕一.血液及骨髓(一)采集时间

1、一般原则(1)、病人发热初期或发热高峰.(2)、使用抗菌素前(3)、已经用药者,应在下次用药前 2.、布鲁杆菌感染(1)、最佳时间:发热期(2)、还可多次采血,24 小时抽 3~4 次 3.、沙门菌感染(1)、可在不同时间采集标本(2、)肠热症患者在病程 1~3 周内采集标本 4.、亚急性心内膜炎:除发热期外,应多次采集

5、急性心内膜炎:治疗前 1~2 小时内分别在 3 个不同部位抽血样培养。

6、急性败血症:脑膜炎、骨髓炎、关节炎、急性未处理的细菌性肺炎和肾 盂肾炎除在发热期采血外,应在治疗前短时间内在身体不同部位采血,分别作需 氧、厌氧培养。

7、不明原因发热(1)、发热期内多次采血(2)、如果 24 小时培养为阴性结果,应继续采集 2~3 份或更多次血样进行 培养。9

8、肺炎链球菌感染:最佳时期为高热、寒战或休克时。

9、分枝杆菌感染:感染初期采血

(二)采集部位及频率

1、急性败血症:24 小时内抽血 3 次或更多,在不同部位如左、右手臂或颈 部采集。

2、急性心内膜炎:治疗前 1~2 小时内,在三个不同部位采集血标本

3、亚急性心内膜炎:第一天在身体不同部位取三次标本。如果 24 小时培养 为阴性结果,应继续采集 2~3 份或更多次多部位采集血样进行培养。

4、无名热 :不定期多次、多部位。24 小时内不超过 3 次,如果培养为阴 性结果,应继续采集送检。

(三)标本采集量 成人:10 毫升血液 儿童:3~5 毫升 婴幼儿:1~2 毫升

(四)标本采集注意事项

1、用 75%酒精消毒瓶盖,不用碘酒消毒

2、严格作好抽血部位的无菌操作

3、同时做需氧和厌氧培养时,先将标本注如厌氧瓶中,然后再注如需氧瓶 里。

4、注如标本的培养瓶立即送检,如不能立即送检时,放室温保存,切勿放 冰箱内

5、化验单上注明采血时间

二、尿液标本

(一)采集时间:抗菌素应用之前,晨起第一次尿液

(二)采集方法

1、段尿采集方法:清洗尿道口,排尿弃去前段尿,留取中段尿 10 毫升于无 菌容器中立即送检。

2、集尿法:结核分枝杆菌集菌检查。将 24 小时尿留在一清洁容器中,取沉 渣 10 毫升送检 10

3、尿法:通过导尿管留尿 10 毫升于无菌容器中立即送检

(三)注意事项

1、尿严格进行无菌操作

2、集后立即送检

3、用药之前进行培养

4、液中不得加防腐剂 三.、粪便标本

(一)采集时间

1、泻病人在急性期用药前采集

2、沙门菌感染

(二)集方法

1、自然排便法:自然排便后,挑取有脓血,黏液部位的粪便于无菌容器内 送检。

2、直肠拭子法:不易获得粪便可采用直肠拭子法采集。

(二)注意事项

1、标本新鲜

2、用药前采集

3、腹泻病人在急性期采集

四、痰及上呼吸道标本

(一)标本采集时间

1、用药前清晨痰

2、鼻咽拭子

(二)采集方法

1、自然咳痰法:清晨起床后,清水反复漱口后用力除第一口痰于无菌容器 中立即送检。

2、上呼吸道标本:采用无菌棉拭子

(三)注意事项 标本采集后立即送检,如不能立即送检,放冰箱保存

五、化脓和创伤标本 用药前,无严格时间要求 肠热症在 2 周以后;胃肠炎病人在急性期采集新鲜粪便 11

(一)标本采集

1、开放性感染:标本采集前清创创口,然后用无菌拭子采取脓汁及病灶深 部分泌物于无菌管中立即送检。

2、闭锁性脓

肿:无菌操作,穿刺抽取标本于无菌管中立即送检。

(二)注意事项

1、药前采集标本

2、能立即送检标本,放 4℃保存,但培养淋病奈瑟菌和脑膜炎奈瑟菌标本除 外。

六、穿刺液

(一)脑脊液

1、集时间 怀疑为脑膜炎的病人,在用药前应立即采集脑脊液进行培养

2、集方法 用腰穿方法采集脑脊液 3~5 毫升于无菌管中立即送检

(二)注意事项

1、于细菌检测:收集脑脊液后 15 分钟内送检,脑脊液不可放冰箱保存。

2、于病毒检测:脑脊液标本应放置冰块,在 4℃15 分钟内送检。

3、行腰穿过程中,严格无菌操作

(三)胆汁及穿刺液

1、检测时间:怀疑感染存在,应尽早在用药之前或停止用药后 1~2 天采集 标本

2、采集方法:无菌穿刺抽取标本于无菌管中立即送检,量不少于 1 毫升

七、烧伤标本

(一)、采集时间 早期、深 П 度烧伤溶痂和Ⅲ度焦痂分离期、后期每天采 集烧伤标本于无菌管中立即送检

(二)、采集方法

(三)、注意事项

1、严格无菌操作

2、床前采集标本进行厌氧培养

3、烧伤 12 小时以后进行采集创面标本,可获得阳性结果

八、生殖道标本 用无菌拭子,直接从烧伤创面的脓汁多部位采集 12

(一)标本采集 尿道分泌物、阴道分泌物、宫颈分泌物、宫呛内容物、前列腺按摩液、精液 等严格无菌操作留取于无菌管中立即送检。

(二)注意事项

1、严格无菌操作

2、采取宫颈标本避免触及阴道壁

3、床前采集标本进行厌氧培养 九.组织标本

(一)采集时间

1、浅表皮肤黏膜

2、深部组织

3、尸检标本

(二)采集方法

(三)注意事项

1、严格无菌操作

2、各种活检组织标本,常温下最长保存 24 小时

3、甲醛固定的组织块标本不用于病原微生物分离 附:样本拒收标准

1、样本上无患者条码或条码不符和要求

2、样本外漏、容器破损及明显受污染的样本

3、样本的检验项目申请不适合进行

4、当日重复送样本(血培养除外)使用抗生素之前采用 手术或内窥镜检查是采集 死后迅速采集 无菌操作留取标本于无菌管中立即送检 〔骨髓形态标本的采集〕

一、髓标本的采集是由临床医生采集,应适量不得超过 0.2ml,取材应避免混血。

二、脑脊液标本的采集是由临床医生采集,采集后应立即送检,接到标本后应及 时制作标本。

三、血液涂片的采集(包括血细胞形态检查和疟原虫检查)方法两种: 由临床护士用 BD 管采血,采血后标本应尽快送检,应在 2 小时内制成血涂 片,标本不可放置过久。13 在未制作血涂片前,标本严禁放入冰箱内保存,分院送检的标本应制成血涂 片送检。冬季室外送检的标本应保温,避免标本受冻溶血,如果标本放置时间超过 24 小时(夏季温度高)可拒收标本。〔细胞遗传(染色体)标本的采集〕

一、预约时要求患者采血化验前半个月内尽量避免应用各种药物。

二、到本室采血时要求患者精神尽量放松,因为患者过度紧张时机体释放的血管 紧张素会影响染色体的生长。〔脱落细胞标本的采集〕

一、痰标本: 留取痰标本的方法有自然咯痰、气管穿刺吸取、经支气管镜抽取等,以自然咯痰为主,本应新鲜。应嘱患者用力咳出气管深处真正的呼吸道分泌 物,于干净痰盒内,密封送到细胞室,而勿混入唾液及鼻咽部分泌物。

二、液体标本(胸、腹水、心包液、尿液、脑脊液等)要求新鲜,送实验室应立 即制片,否则细胞自溶退化而破坏,影响诊断。如不能立即制片,可在标本 中加入 40%甲醛溶液以防止细胞自溶。液体标本要求标本量 50-100ml(脑 脊液除外)。

三、乳腺溢液:询问病史,让病人自行或制片人员沿乳腺导管轻轻挤压,将第一 滴溢液去掉,再挤出制片,如有血选择血性乳液,粘片制成薄厚均匀的涂片,马上固定。

四、气管镜刷片、妇科刮片由临床医生涂制。但标本需马上固定。若做液基细胞 按液体标本方法制片。

五、穿刺细胞学:到时本室取标本。〔血尿定位标本的采集〕

一、患者清晨 3 点排尿一次,这次尿不要,然后留取 3 点 6 点全程尿一次。全部 收集在干燥、清洁、无污染的容器内来检验时带来。

二、早 8 点到检验科由血尿定位定提供清洁尿杯分三杯留取新鲜尿液。

三、本室可保存尿液中存在的有形成分形态冰箱温度为 2℃~8℃。〔粪便标本的采集〕 14 粪便标本的采集方法直接影响检验结果的准确性,通常采取自然排出的粪 便:

1、留取新鲜指头大小(5 克)的大便,放入干燥、清洁、无吸水性的容器 内送检。不要混入其它杂物,容器上应贴好标签、条码或注明患者姓名、科别、床号、收集时间及

检测项目。

2、本应选择具有病理意义的便(如浓血、血粘液、水样等选取)应在半小 时内送检,2 小时内检测完毕,否则应 PH 变化及消化酶的影响可使便的细胞成 分破坏分解。最多不应超过 4 小时。

3、无法排便而又必须检查时,可经肛门用肛试子采便。

4、试验应嘱咐患者在收集标本前三天禁食动物性食物,并禁服铁剂和维生 素 C.且连续检查三天,收集后须迅速送检。

5、寒冷时应保持温度,避免冻溶防止有形成分破坏。〔尿标本的采集〕

一、根据不同检验目的。留取晨尿和餐后 2h 尿、12h 尿、24h 尿及随机尿。.尿常规检验通常为:

(一)、新鲜晨尿(这时的尿标本较浓缩和酸化,不受运动及进餐等影响。适用于尿蛋白、尿沉渣、尿亚硝酸盐检验及细菌培养)和随机尿(尿液可 能被稀释或受进餐、药物以及新陈代谢等影响,尿中成分检出情况不尽相同。餐后尿检测易出现糖尿)。

(二)、尿胆原检测以 14:00~16:00 时间段内留取的尿液为好。

(三)、尿液定量检查需要留取 12h 或 24h 的混合尿液,留取时应按规定时 间内排出之尿液装入含有合适防腐剂的洁净容器内,混匀后记录总量,取 10ml 送检。1、12h 尿:适用于 Addis 计数。试验当日清晨起,除正常饮食外,不得 再饮水,以利尿液浓缩。于晚上留尿开始时,嘱患者排尿并弃去,收集此后 12h 内的全部尿液。2、24h 尿:适用于代谢产物 24h 定量测定或 24h 尿沉渣抗酸杆菌检查。留取要求同 12h 尿。15

二、尿液标本采集应清洁、干燥的一次性容器,应用时贴上条码。避免经血、白带、精液、粪便混入。标本留取后及时送检,以免因光线、细菌滋生造成 化学物质和有形成分的改变和破坏。作细菌检验的标本,在微生物标本采集 注意事项介绍。

三、尿标本的防腐与保存: 冷藏法:4℃冰箱,不得超过 6 小时。但应注意,有些成分如尿酸盐在低 温时会沉淀析出,影响其化学成分的测定;同时,碱性尿液中的 红细胞以及细胞管型即使在冰箱中也会破坏。因此,要根据检测 项目的需要,选择不同的防腐及保存方法。甲苯法:100ML 尿加 0.5ML 甲苯,适用于 24 小时尿液化学检查。〔前列腺标本留取注意事项〕 由临床医师进行,标本少时 1 滴,多时可达 1ml 左右。置洁净载物玻片上,立即送检。以防干涸。〔精液标本的采集〕

一、嘱患者禁止合房七天,留取精液。

二、直接用干燥、防漏、洁净的容器留取。容器不易过大,以免沾留太多。要求 在半小时内保温送检验科。冬天最好放在内衣口袋里。

三、标本采集次数:精子生成的日间变化较大,因此,对于少精症患者不能仅凭 1 次检查结果诊断。一般间隔 1~2 周再检查 1 次,连续检查 2~3 次后再作 判断。

四、避免用避孕套工具留取。影响活动力。

五、必要时在医生指导下留取。〔浆膜腔穿刺液的采集〕由临床医师进行;穿刺必须注意无菌操作,勿使细菌污染穿刺部位及标本。采取量由检验目的按条码要求而定。为防止细胞变性、凝块发生或细菌溶解,应 及时送检及检验。如不能送检,可加适量的枸橼酸钠抗凝剂(蓝色真空管)内,混均后立即送检。如要观察标本有无凝固现象,则不能加抗凝剂。[胃液标本采集] 16 先将晨间空腹残余胃液抽空弃去。然后在 1h 内连续抽出胃液放入同一瓶内。〔脑脊液标本的采集〕

一、本由医通过腰椎穿刺采集。穿刺应顺利,避免将因液混入标本。

二、标本一般收集 3 管,每管 2ml。第 1 管做细菌培养;第 2 管做化学或免疫检 查;第 3 管做常规及细胞计数。

三、标本就及时送检、及时检验。久置可致细胞破坏、变性、自容,糖分解及病 原菌破坏或溶解等影响检验结果。17 患者

1、状态

2、时间 避免剧烈活动、禁食 12h 后作为采血标准。一般生理成分在晨起时都处于较低水平,随着起床和活动增加而逐步 上升,下午较高,入夜休息和睡眠后渐低,晨起前最低。个体日变动差(最高与最低)项目 钠(mmol/L)钾(mmol/L)氯(mmol/L)磷(mmol/L)总蛋白(mmol/L)白蛋白/球蛋白(mmol/L)尿素氮(mmol/L)尿酸(mmol/L)

3、生活环境

4、药物

5、吸烟

6、性别 停服能干扰检查项目的药物,特别是进行脏器功能试验时更为重要 吸烟对检查的影响与吸烟量成正比.对许多检查项目有影响,女性受性期周期影响较大,男女发育阶段也 日变动差 4.8 0.4 3 0.22 0.6 0.3 1.2 0.49 项目 胆固醇(mmol/L)甘油三酯(mmol/L)碱性磷酸酶(King U)丙氨酸氨基转移酶(U/L)3.6 日变动差 0.52 0.33 门冬氨酸

氨基转移酶(U/L)3.9 乳酸脱氢酶(U/L)胆碱酯酶(⊿ph)淀粉酶(somogy U/L)2.7 0.1 17 有一定的差别。

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