果蝇杂交的实验报告

果蝇杂交的实验报告（精选4篇）

篇1：果蝇杂交的实验报告

果蝇杂交实验正式报告 姓名:

学号:

班级:

日期:

****年**月**日 果蝇得杂交实验

一、实验目得

1、了解伴性遗传与常染色体遗传得区别; 2、进一步理解与验证伴性遗传与分离、连锁交换定律;3、学习并掌握基因定位得方法、二、实验原理

红眼与白眼就是一对相对性状,控制该对性状得基因位于 X 染色体上,且红眼对白眼就是完全显性。当正交红眼雌蝇与白眼雄蝇杂交时,无论雌雄均为红眼;反交时雌蝇都就是红眼,雄蝇都就是白眼。

三、实验材料与器具

野生型雌蝇雄蝇,突变型雌蝇雄蝇、放大镜、麻醉瓶、毛笔、超净台、乙醚、酒精棉球、酵母、玉米粉、丙酸、蔗糖、琼脂

四、实验流程

配培养基→选处女蝇→杂交(正交,反交)→观察Ｆ１

五、实验步骤

1、配培养基

2、选处女蝇

在超净台上选取野生型与突变型得雄蝇雌蝇

3、杂交

(1)正交

取红眼雌蝇 5 个与白眼雄蝇 4 个,放入培养瓶中(♀)红眼()×(♂)白眼()(2)反交

取红眼雌蝇３个与白眼雄蝇 4 个,(♀)白眼()×(♂)红眼()

贴上标签,放于恒温箱饲养 4、观察并记录

分别将正反交得Ｆ1 代用乙醚麻醉,倒在白纸上,分别数红白眼得雌蝇与雄蝇,记录数据。

六、实验结果与分析

在正交实验中,F1 代雌雄硬都就是红眼;在反交实验中,雌性都就是红眼,雄性都就是白眼,但也出现了个不该出现得雌性白眼

分析:在伴性遗传中,也有个别例外产生,这就是由于2条X不分离造成得,F1 中出现得不该出现得雌性白眼,但就是这种情况极为罕见。

七、注意事项

要经常观察,如果培养瓶内有生霉得,必须将果蝇转移到干净得培养瓶中 F１代幼虫出现即可将亲本放出或处死 要严格控制温度,偏高得温度或者偏低得温度都可能引起果蝇得

死亡 亲本必须就是处女蝇,其原因就是雌蝇生殖器官有受精囊,可以保存交配所得得大量精子,能使交配后卵巢产生得卵受精。在杂交时若不就是处女蝇,其体内已储有另一类型雄蝇得精子,会严重影响实验结果,导致整个实验失败。

在 F1 代羽化前,一定要将亲本全部清除干净并处死,以免出现回交现象,影响结果 果蝇得麻醉要适当,掌握好麻醉时间,麻醉过度会使果蝇直接死亡 取果蝇得时候用毛笔,避免用其她锋利得器具,避免戳伤果蝇,影响生长繁育 八、个人总结

第一次饲养果蝇,开始时感觉这么复杂与漫长得实验就是一个很大得担心,除此之外还有对于果蝇这种实验动物得畏惧也就是一个小小得障碍、但就是通过配培养基与随后得杂交等一系列得实验过程,我们越来越熟悉操作,感觉越来越得心应手。其实果蝇很干净,也很好饲养,更不烦人,渐渐地 我们开始有些享受这一个长时间得实验,同时也在心里默默得感谢我们饲养得果蝇短暂得生命给我们带来得成果。实验过程长,要求也高。通过自己得全力以赴与与同伴得合作,我们最终完成了实验,我对自己得实验技能更加有信心,也体会到合作就是一件多美好得事情。另外还要真心得感谢邵老师与其她为我们实验前前后后付出辛劳得老师,在我们开始试验之前,您们已经为我们做了很多保证我们实验得成功与减轻我们得负担,实验过程中,还要随时回答我们无休止得奇怪问题,但老师始终都很有耐心,给予了我们极大得帮助,谢谢您们。

篇2：果蝇杂交的实验报告

果 蝇 三点 测 交 实验报 告

篇一：果蝇三点测交实验

实验报告

20XX 年 11 月 2 日—20XX 年 11 月 27 器编号___

摘要：

本实验通过白眼、小翅、焦刚毛三隐性雌果蝇与野生型雄果蝇杂交，得到 F1 代后使其自交，统计 F2 代各类果蝇数目，进行连锁分析并验证连锁互换定律。引言：生殖细胞形成过程中，位于同一染色体上的基因是连锁在一起，作为一个单位进行传递，称为连锁律。在生殖细胞形成时，一对同源染色体上的不同对等位基因之间可以发生交换，称为交换律或互换律。

连锁和互换是生物界的普遍现象，也是造成生物多样性的重要原因之一。一般而言，两对等位基因相距越远，发生交换的机会越大，即交换率越高；反之，相距越近，交换率越低。因此，交换率可用来反映同一染色体上两个基因之间的相对距离。以基因重组率为 1%时两个基因间的距离记作 1

厘摩（centimorgan，cm）。

基因座位很近，只发生一次交换，重组值＝交换率

基因座位较远，可发生两次交换，重组值＜交换率

基因图距就是通过重组值的测定而得到的。如果基因座位相距很近，重祖率与交换率的值相等，可以直接根据重组率的大小作为有关基因间的相对距离，把基因顺序地排列在染色体上，绘制出基因图。如果基因间相距较远，两个基因往往发生两次以上的交换，这是如果简单的把重组率看作交换率，那么交换率就会被低估，图距就会偏小。这时需要利用试验数据进行校正，以便正确估计图距。基因在染色体上的相对位置的确定除进行两个基因间的测交外，更常用的是三点测交法，三点测交法就是研究三个基因在染色体上的位置。如 a、b、c三个基因是连锁的，要测定三个基因的相对位置可以用野生型果蝇（+++，表示三个相应的野生型基因）与三隐性果蝇（abc，三个突变型基因）杂交，制成三因子杂种 abc/+++，再用三隐性个体对雌性三因子杂种进行测交，以测出三因子杂种在减数分裂中产生的配子类型和相应数目。由于基因间的交换，除产生亲本类型的两种配子外，还有六种重组型配子，因而在测交后代中有 8 种不同表型的果蝇出现，这样经过数据的统计和处理，一次试验就可以测出三个连锁基因的距离和顺序，这种方法，就叫三点测交或三点试验。

代可能会出现。

实验结果

统计 F2 代各类果蝇的数目，得到下表:

分析讨论

1.性状特征：三隐性果蝇（wmsn）个体的眼睛是白色的（w）；翅膀比野生型的翅膀短些，翅仅长至腹端，称小翅（m）；刚毛是卷曲的，称焦刚毛或卷刚

毛（sn）。这三个基因都位于 x 染色体上，所以在本实验中可以同时进行伴性遗传的实验观察。

2.子杂种，雄雌是（横线表示一条 x 染色体，箭头横线表示一条 Y 染色体）。子一代雌、雄果蝇相互交配，得测交后代，如下图所示：

+++wmsn3p×wmsn3

wmsn3wmsn3×F1+++自交后代子一代的雌蝇表型是野生型，雄蝇是三隐性。得到的测交后代其中多数个体与原亲本相同。同时也会出现少量与原亲本不同的个体，即重组型。重组型是基因间发生交换的结果。

在连锁的三基因里，交换可以发生在 m-sn 之间（a），也可以发生在 sn－w 之间（b），或同时发生在 m-sn 之间和 sn－w 之间（c）。总共可以产生 8 种不同的配子。

子一代雌蝇是三因子杂合体，可形成 8 种配子，而子一代雄蝇是三隐性个体，所以子一代雌雄蝇相互交配时，即进

行测交，子二代可以得到 8 种表型。根据 8 种表型的相对频率，可以计算重组值，并确定基因排列顺序。

3.图距和重组值的关系：图距表示基因间的相对距离，通常是由两个临近的基因图距相加得来的。重组值表示了基因间的交换频率，所以图距往往并不同于重组值。图距可以超过 50％，重组

值只会逐渐接近而不会超过 50％，只有基因相距较近时，图距才和重组值相等。

msn3wmsn3wmsn3w

++++++形成配子形成配子

msn3wmsn3wmsn3w

msn3+m+wm++

++w+sn3++sn3w

+++++++++

（a）（b）（c）

1.经过统计计算出，m—sn 图距为 15.87，m-w 图距为 29.36，w-sn 图距为 14.68。基因顺序为 w-sn-m。

2.实验结果与已知遗传图谱对比，基因的顺序为 w-sn-m。w-m的图距为 35cm。w-sn 的图距为 15.2cm。sn-m 的图距为 19.2cm

篇3：实验室培养果蝇的方法和注意事项

1 果蝇的培养

1.1 培养基的配方

培养基是饲养果蝇的基础, 不同材料的配制方法不尽相同。结合几年的培养经验, 目前西安文理学院生命科学系采用的效果较好的配方为:玉米粉100g, 糖130g, 琼脂10g, 酵母片20g, 苯甲酸0.75g, 丙酸1.25 ml, 加蒸馏水1 200ml。

1.2 配制方法

1) 取一定量的水将玉米粉拌匀, 加热至糊状。期间要不断搅拌, 防止糊底;

2) 将糖和琼脂加入水中煮沸溶解;

3) 将酵母片在研钵中加水研磨至糊状。

将1) 、2) 二者混合后降温至50℃左右时加入3) 苯甲酸和丙酸, 搅拌均匀后即可分装到培养瓶中。

1.3 培养基的分装

将干净的培养瓶在121℃下灭菌20min, 倒入约2.5cm厚的未完全冷却的培养基。待培养基冷却凝固后即可将果蝇转入培养。

1.4 果蝇处理

因为果蝇对乙醚很敏感, 易麻醉, 可以对作种的果蝇轻度麻醉。 (果蝇翅膀外展45℃角表示已死亡) 。选用广口瓶作为麻醉瓶, 瓶塞内部塞上适量的脱脂棉, 滴加数滴乙醚。培养瓶口与麻醉瓶口对接轻拍上方的培养瓶将果蝇落到麻醉瓶里。然后迅速盖好两个瓶塞, 半分钟左右, 果蝇被麻醉, 活动缓慢, 注意麻醉不得过度, 如果果蝇两翅展开且肢体僵硬, 说明已致死。因此, 必须抓紧时间移人新培养瓶中, 可将培养瓶横卧, 用干净毛笔把果蝇挑人, 待果蝇清醒后, 再竖立加塞, 防止果蝇粘在培养基上[2]。

1.5 原种培养

留种培养时, 事先检查一下果蝇有没有混杂, 以防原种丢失。亲本的数目一般每瓶5~10对[1]。原种一般可在18℃下培养。原种大约4周左右换一次培养基, 要多注意观察, 具体根据培养温度的不同, 视培养基的消耗程度而定。每一原种培养至少保留两套, 并注明名称和日期, 培养时避免日光直射。

2 注意事项

果蝇培养过程中有几个关键性的环节, 如若掌握不好, 将不能使果蝇正常生长, 甚至导致部分或全部死亡。因此, 应特别注意[3]。

2.1 玉米粉的溶解

玉米粉一定要先用凉水拌匀后再加热, 不能直接倒入加热的培养基中, 否则容易聚集成团, 不易溶解。配制的培养基容易出现块状, 不易于果蝇的利用。

2.2 添加酵母的时间

酵母为活性物质, 高温易失活。因此应当在培养基冷却到50℃左右时加入到培养基中, 切勿将酵母粉加入到培养基中直接煮沸。

2.3 培养温度

果蝇的培养温度要以具体使用情况而定, 在遗传学教学实验中, 由于实验时间相对较短, 要求果蝇的繁殖速度相对就较快, 因此可以在23~25℃的条件下培养, 而保种则应在18℃左右下培养, 以免培养基消耗过快, 减少转接次数。

3 常见问题处理

3.1 培养瓶内发霉

因为酵母菌与霉菌的生活环境相似, 且由于培养过程几乎都在培养箱中进行, 通风不良, 时间久了容易滋生霉菌。因此, 要使用的培养瓶要严格灭菌, 当室温与培养温度相似时可以在实验室中培养, 加强通风。对已经发霉的培养基, 在具有备用种时可以将其淘汰, 若仅此一瓶, 就要杀死果蝇身上携带的霉菌。方法是将带有霉菌孢子的成蝇倒入空培养瓶中, 棉塞上倒适量的75%酒精, 再将瓶口塞紧, 利用酒精具有挥发性, 挥发后的酒精充满整个瓶内, 从而将果蝇身上的霉孢子杀死。在操作上应注意两点:一是倒在棉塞上的酒精量要合适, 过多果蝇易醉昏, 过少杀死不了霉菌孢子;二是果蝇呆在空瓶内的时间要恰当, 以2d为好[4]。转入新培养基的第二天再次把果蝇转到另一新培养基中, 反复5~6次。

3.2 培养瓶内壁凝结水珠

培养基分装到培养瓶时热蒸汽会凝结在瓶壁, 如果过早使用, 果蝇会溺死。因此, 在分装后要自然冷却一段时间, 待瓶壁的水珠蒸发后使用。如若放置在冰箱内保存, 使用前若发现瓶壁沾有水珠, 则需用灭过菌的滤纸条吸干后使用。

3.3 培养基干结成块

一般配制的培养基放置时间过久或培养温度较高时, 培养基因为失水而与瓶壁分离, 干结成块, 此种情况下果蝇无法正常生存, 更无法产卵。因此, 要及时更换培养基。

3.4 培养基过湿

果蝇代谢过程中会产生一定的废物, 时间长了容易使培养基变成稀糊状, 果蝇容易粘附在培养基表面, 由于无法飞行和觅食而死亡。因此, 要及时根据培养基的情况转接果蝇。

3.5 果蝇生活力降低

由于果蝇长期在偏低的温度下保种, 低温使其生活力下降, 许多性状出现退化, 甚至变异, 影响实验结果。因此, 每隔一定时期必须进行复壮。复壮方法为用乙醚把果蝇麻昏, 选择个体较大的、性状具有本品种特点的雌雄果蝇进行混合培养。再在产出的一代中又选择个体较大的、性状具有本品种特点的雌雄果蝇进行混合培养。如此进行一次, 后代就能保持个体较大, 又遗传了本品系性状的原种[5]。

摘要：本文介绍了遗传学实验培养果蝇的方法以及果蝇长期培养过程中容易出现的问题并给出相应的处理方法。

关键词：果蝇,实验室,培养

参考文献

[1]刘祖洞, 江绍慧.遗传学实验[M].北京:高等教育出版社, 1987:63.

[2]陈晓芸.果蝇的饲养[J].生物学通报, 2006 (2) :51.

[3]王转斌.果蝇的保种技巧及唾液腺染色体的制备[J].实验技术与管理, 2002 (3) :38.

[4]龚慧明.果蝇培养基长霉的处理措施[J].生物学教学, 2007 (4) :52.

篇4：果蝇杂交的实验报告

在接下来的几周内，NT第一产业部的工作人员将开始把果蝇装在笼里，带去Darwin and Katherine附近的商业果园里的芒果树上，观察害虫与作物是如何关系。

昆虫学家Austin McLennan 说，如果试验证明未经处理的芒果中有果蝇而没什么风险，则果农可以明显降低采后处理费用。

“要进入一个州际或国际市场，你必须保证这些芒果是无果蝇存在的”他说。

“在国内我们采用收获后的化学处理，但药剂在国际市场非常昂贵。我们通常需要一定的设备，如蒸汽热处理设备或照射植物，这些处理方式的价格很昂贵。但同时它们会引起果实的质量问题。如果我们准备好了，那产品可以出口国际市场，但是很难，它不是直接运往Darwin的，而是要通过布里斯班和黄金海岸运往亚洲。因此我们在寻找更低廉和更好的方法来处理这件事。”

McLennan博士说，研究表明，未经处理的芒果具备较低的有害生物风险，试验结果对海外贸易合作伙伴将很有说服力。

“我们正在进入3或4年有价值的工作的最后阶段，我们已经表明，未经处理的芒果被果蝇感染的风险是非常、非常低的，”他说。

“事实上，一旦你开始依等级排列水果那就只会选择优质水果，大部分的风险都消失，即使不是全部。但是我们的市场准入监管机构在其他国家讲究的是‘证明’。我们不会让虫卵或幼虫在水果里拥有发育的机会。如果结果这样，那么它对产业的直线上升是非常有利的。”