内镜生物采样方法

第一篇：内镜生物采样方法

食品微生物检验采样方法

按照上述采样方案,能采取最小包装的样品就采取完整包装,必须拆包装取样的应按无菌操作进行。

不同类型的食品应采用不同的工具和方法: 1.液体样品：充分混匀,以无菌操作开启包装,用100mL无菌注射器抽取,注入无菌容器。 2半固体样品：以无菌操作拆开包装,用无菌勺子从几个部位挖取样品,放入无菌容器。 3.固体食品：大块整体食品应用无菌刀具和镊子从不同部位割取,割取时应兼顾表面与深部,注意样品的代表性; 小块大包装食品应从不同部位的小块上切取样品,放入无菌容器。 若为检验食品的污染情况，可取表层样品;若为检验食品品质的情况，应从深部取样。 4.冷冻食品：大包装小块冷冻食品按小块个体采取;大块冷冻食品可以用无菌刀从不同部位削取样品或用无菌小手锯从冻块上举取样品,也可以用无菌钻头钻取碎屑状样品,放入容器。 固体食品和冷冻食品的取样还应注意检验目的,若需检验食品污染情况,可取表层样品;若需检验其品质情况,应取深部样品。 5.生产工序监测

(1)车间用水。自来水样从车间各水龙头上采取冷却水;汤料等从车间容器不同部位用100mL无菌注射器抽取。

(2)车间台面、用具及加工人员手的卫生监测。用5cm2孔无菌采样板及5支无菌棉签擦拭25cm2面积。若所采表面干燥,则用无菌稀释液润湿棉签后擦拭;若表面有水,则用干棉签擦拭,擦拭后立即将棉签头用无菌剪刀剪入盛样容器。

(3)车间空气采样。直接降尘法。将5个直径90mm的普通营养琼脂平板分别置于车间的四角和中部,打开平皿盖5min,然后盖盖送检。

第二篇：动物疫病实验室检验采样方法

NY/T 541—2002

前言

动物病料样品的采集是动物疾病诊断、流行病学调查或免疫监测所不可缺少的重要步骤，在各国的兽医学标准中都把这一部分纳入第一重要内容，广泛应用于动物疾病流行病学调查、动物检疫和科研教学。世界动物卫生组织[World Organization for Animal Health(英)，Office Intentional des Epizootic(法)，OIE]推荐的诊断方法中，也将该部分内容列为第一部分内容。

本标准是依据世界动物卫生组织(OIE)《诊断试验和疫苗标准手册》(2000版)(Manual of Standards for Diagnostic Tests and Vaccines ，2000)第1·1.1章"Sampling Methods"的技术要求编写的。本标准与该章的非原则性差异在于: ——本标准结合本国实践经验对操作程序和条件作了更具体的陈述和规定;

——本标准根据GB/T1.1-2000的规定和汉语习惯将该章的陈述性文本改为规范性标准文件。

本标准的附录A为规范性附录。 本标准由农业部畜牧兽医局提出。

本标准由全国动物检疫标准化技术委员会归口。 本标准起草单位:农业部动物检疫所。

本标准主要起草人:吴延功、杜元钊、朱万光、刘佩兰、仰惠芬。 1范围

本标准规定了动物疫病诊断实验室的样品采集方法。

本标准适用于病因(原)学、病理组织学、血清学、免疫学等实验室检验所需样品的采集。

2样品采集的一般原则和采集前的准备 2.1样品采集所遵循的一般原则

2.1.1凡发现患畜(包括马、牛、羊及猪等)有急性死亡时，如怀疑是炭疽，则不可随意解剖，应采取患畜的血液，万不得已时局部解剖作脾脏触片的显微镜检查。只有在确定不是炭疽后，方可进行剖检。

2.1.2采取病料的种类，根据不同的疾病或检验目的，采其相应的脏器、内容物、分泌物、排泄物或其他材料;进行流行病学调查、抗体检测、动物群体健康评估或环境卫生检测时，样品的数量应满足统计学的要求。采样时应小心谨慎，以免对动物产生不必要的剌激或损害和对采样者构成威胁。在无法估计病因时，可进行全面的采集。检查病变与采集病料应统筹考虑。

2.1.3内脏病料的采取，如患畜已死亡，应尽快采集，最迟不超过6h。 2.1.4血液样品在采集前一般禁食8h。

2.1.5应做好人身防护，严防人畜共患病感染。

2.1.6应防止污染环境，防止疫病传播，做好环境消毒和病害肉尸的处理。 2.2使用器械的消毒

刀、剪、镊子等用具煮沸消毒30min，使用前用酒精擦拭，用时进行火焰消毒。器皿(玻制、陶制等)经103kPa高压30min ，或经160℃干烤2h灭菌;或放于0.5%～1%的碳酸氢钠(NaHCO3)水中煮沸10min～15min，水洗后，再用清洁纱布擦干，保存于酒精、乙醚等溶液中备用。注射器和针头放于清洁水中煮沸30min。一般要求使用"一次性"针头和注射器。采取一种病料，使用一套器械与容器，不可用其再采其他病料或容纳其他脏器材料。采过病料的用具应先消毒后清洗。检查过传染性海绵状脑病的器械要放在2mol/L的氢氧化纳(NaOH)溶液中浸泡2h以上，才可再使用。

3样品的采集 3.1血液

3.1.1采血部位

大的哺乳动物可选用颈静脉或尾静脉采血，也可采胫外静脉和乳房静脉血。毛皮动物小量采血可穿刺耳尖或耳壳外侧静脉，多量采血可在隐静脉采集，也可用尖刀划破趾垫

1 0.5cm深或剪断尾尖部采血。啮齿类动物可从尾尖采血，也可由眼窝内的血管丛采血;兔可从耳背静脉、颈静脉或心脏采血。禽类通常选择翅静脉采血，也可通过心脏采血。

3.1.2采血方法

对动物采血部位的皮肤先剃毛(拔毛)，75%的酒精消毒，待干燥后采血，采血可用针管、针头、真空管或用三棱针穿刺，将血液滴到开口的试管内。禽类等的少量血清样品的采集，可用塑料管采集。用针头刺破消毒过的翅静脉，将血液滴到直径为3mm～4mm的塑料管内，将一端封口。

3.1.3采血种类 3.1.3.1全血样品

进行血液学分析，细菌、病毒或原虫培养，通常用全血样品，样品中加抗凝剂。抗凝剂可用0.1%肝素、阿氏液(见第A.l章)(阿氏液为红细胞保存液，使用时，以1份血液加2份阿氏液)，或枸橼酸钠(3.8%～4%的枸橼酸钠0.1mL，可抗1mL血液)。采血时应直接将血液滴入抗凝剂中，并立即连续摇动，充分混合。也可将血液放入装有玻璃珠的灭菌瓶内，震荡脱纤维蛋白。

3.1.3.2血清样品

进行血清学试验通常用血清样品。用作血清样品的血液中不加抗凝剂，血液在室温下静置2h～4h(防止曝晒)，待血液凝固，有血清析出时，用无菌剥离针剥离血凝块，然后置4℃冰箱过夜，待大部分血清析出后取出血清，必要时经低速离心分离出血清。在不影响检验要求原则下可因需要加入适宜的防腐剂。做病毒中和试验的血清避免使用化学防腐剂(如硼酸、硫柳汞等)。若需长时间保存，则将血清置20℃以下保存，但要尽量防止或减少反复冻融。样品容器上贴详细标签。3.1.3.3血浆的采集

采血试管内先加上抗凝剂(每10mL血加柠檬酸钠0.04g～0.05g)，血液采完后，将试管颠倒几次，使血液与抗凝剂充分混合，然后静止，待细胞下沉后，上层即为血浆。

3.2一般组织 3.2.1采样方法

用常规解剖器械剥离死亡动物的皮肤，体腔用消毒的器械剥开，所需病料按无菌操作方法从新鲜尸体中采集。剖开腹腔后，注意不要损坏肠道。

作病原分离用:进行细菌、病毒、原虫等病原分离所用组织块的采集，可用一套新消毒的器械切取所需器官的组织块，每个组织块应单独放在已消毒的容器内，容器壁上注明日期、组织或动物名称。注意防止组织间相互污染。

3.2.2采样种类

3.2.2.1病原分离样品的采集

用于微生物学检验的病料应新鲜，尽可能的减少污染。用于细菌分离的样品的采集，首先以烧红的刀片烫烙脏器表面，在烧烙部位刺一孔，用灭菌后的铂耳伸入孔内，取少量组织或液体，作涂片镜检或划线接种于适宜的培养基上。

3.2.2.2组织病理学检查样品的采集

采集包括病灶及临近正常组织的组织块，立即放入10倍于组织块的10%福尔马林溶液中固定。组织块厚度不超过0.5cm，切成1cm2～2cm2 (检查狂犬病则需要较大的组织块)。组织块切忌挤压、刮摸和用水洗。如作冷冻切片用，则将组织块放在0℃～4℃容器中，尽快送实验室检验。

3.3肠内容物或粪便

肠道只需选择病变最明显的部分，将其中的内容物弃去，用灭菌生理盐水轻轻冲洗;也可烧烙肠壁表面，用吸管扎穿肠壁，从肠腔内吸取内容物，将肠内容物放入盛有灭菌的30%甘油盐水缓冲保存液(见第A.2章)中送检。或者，将带有粪便的肠管两端结扎，从两端剪断送检。

从体外采集粪便，应力求新鲜。或者，用拭子小心地插到直肠粘膜表面采集粪便，然后将拭子放入盛有灭菌的30%甘油盐水缓冲保存液中送检。

3.4胃液及瘤胃内容物 3.4.1胃液采集

胃液可用多孔的胃管抽取。将胃管送入胃内，其外露端接在吸引器的负压瓶上，加负压后，胃液即可自动流出。

3.4.2瘤胃内容物采集

2 反刍动物在反刍时，与食团从食道逆入口腔时，立即开口拉住舌头，另一只手深入口腔即可取出少量的瘤胃内容物。

3.5呼吸道

应用灭菌的棉拭子采集鼻腔、咽喉或气管内的分泌物，蘸取分泌物后立即将拭子浸入保存液中，密封低温保存。常用的保存液有pH7.2～7.4的灭菌肉汤(见第A.3章)或磷酸盐缓冲盐水，如准备将待检标本接种组织培养，则保存于含0.5%乳蛋白水解物的汉克氏(Hanks)液中。一般每支拭子需保存液5mL。

3.6生殖道

可采集阴道或包皮冲洗液，或者采用合适的拭子，有时也可用尿道拭子采集。 3.7眼睛

眼结膜表面用拭子轻轻擦拭后，放在灭菌的30%甘油盐水缓冲保存液中送检。有时，也采取病变组织碎屑，置载玻片上，供显微镜检查。

3.8皮肤

病料直接采自病变部位，如病变皮肤的碎屑、未破裂水泡的水泡液、水泡皮等。 3.9胎儿

将流产后的整个胎儿，用塑料薄膜、油布或数层不透水的油纸包紧，装入木箱内，立即送往实验室。

3.10小家畜及家禽

将整个尸体包入不透水塑料薄膜、油纸或油布中，装入木箱内，送往实验室。 3.11骨

需要完整的骨标本时，应将附着的肌肉和韧带等全部除去，表面撒上食盐，然后包入浸过5%石炭酸溶液的纱布中，装入不漏水的容器内送往实验室。

3.12脑、脊髓

3.12.1全脑、脊髓的采集

如采取脑、脊髓做病毒检查，可将脑、脊髓浸入30%甘油盐水液中或将整个头部割下，包入浸过消毒液的纱布中，置于不漏水的容器内送往实验室。

3.12.2脑、脊髓液的采集 3.12.2.1采样前的准备

采样使用特制的专用穿刺针，或用长的封闭针头(将针头稍磨钝，并配以合适的针芯);采样前，术部及用具均按常规消毒。3.12.2.2采样方法

3.12.2.2.1颈椎穿刺法:穿刺点为环枢孔。将动物实施站立或横卧保定，使其头部向前下方屈曲，术部经剪毛消毒，穿刺针与皮肤面呈垂直缓慢刺入。将针体刺入蛛网膜下腔，立即拔出针芯，脑脊髓液自动流出或点滴状流出，盛入消毒容器内。

3.12.2.2.2腰椎穿刺法:穿刺部位为腰荐孔。实施站立保定，术部剪毛消毒后，用专用的穿刺针刺入，当刺入蛛网膜下腔时，即有脑脊髓液滴状滴出或用消毒注射器抽取，盛入消毒容器内。

3.12.2.3采样数量

大型动物颈部穿刺一次采集量35mL～70mL，腰椎穿刺一次采集量15mL～30mL。 3.13液体病料

采集胆汁、脓、粘液或关节液等样品时，用烫烙法消毒采样部位，用灭菌吸管、毛细吸管或注射器经烫烙部位插入，吸取内部液体材料，然后将材料注入灭菌的试管中，塞好棉塞送检。也可用接种环经消毒的部位插入，提取病料直接接种在培养基上。

供显微镜检查的脓、血液及粘液抹片的制备方法:先将材料置玻片上，再用一灭菌玻棒均匀涂抹或另用一玻片推抹。组织块、致密结节及脓汁等亦可在两张玻片中间，然后沿水平面向两端推移。用组织块作触片时，持小镊将组织块的游离面在玻片上轻轻涂抹即可。

3.14乳汁

乳房先用消毒药水洗净(取乳者的手亦应事先消毒)，并把乳房附近的毛刷湿，最初所挤的3～4把乳汁弃去，然后再采集10mL左右乳汁于灭菌试管中。进行血清学检验的乳汁不应冻结、加热或强烈震动。

3.15精液

精液样品用人工方法采集，所采样品应包括"富精"部分，并避免加入防腐剂。 3.16尿液的采集

3 在动物排尿时，用洁净的容器直接接取。也可使用塑料袋，固定在雌畜外阴部或雄畜的阴茎下接取尿液。采取尿液，宜早晨进行。

3.17环境

为监测环境卫生或调查疾病，可从遗弃物、通风管、下水道、孵化厂或屠宰场采集有代表性样品。

4送检样品的记录

送往实验室的样品应有一式三份的送检报告，一份随样品送实验室，一份随后寄去，另一份备案。样品记录至少应包括以下内容: a)畜主的姓名和畜禽场的地址;

b)畜(农)场里饲养的动物品种及其数量; c)被感染的动物种类;

d)首发病例和继发病例的日期及造成的损失; e)感染动物在畜群中的分布情况;

f)死亡动物数、出现临床症状的动物数量及其年龄;

g)临床症状及其持续时间，包括口腔、眼睛和腿部的情况，产奶或产蛋的记录，死亡情况和时间，免疫和用药情况等;

h)饲养类型和标准，包括饲料种类;

i)送检样品清单和说明，包括病料的种类、保存方法等; j)动物治疗史; k)要求做何种试验;

l)送检者的姓名、地址、邮编和电话; m)送检日期。 5样品的运送

所采集的样品以最快最直接的途径送往实验室。如果样品能在采集后24h内送抵实验室，则可放在4℃左右的容器中运送。只有在24h内不能将样品送往实验室并不致影响检验结果的情况下，才可把样品冷冻，并以此状态运送。根据试验需要决定送往实验室的样品是否放在保存液中运送。

要避免样品泄漏。装在试管或广口瓶中的病料密封后装在冰瓶中运送，防止试管和容器倾倒。如需寄送，则用带螺口的瓶子装样品，并用胶带或石蜡封口。将装样品的并有识别标志的瓶子放到更大的具有坚实外壳的容器内，并垫上足够的缓冲材料。空运时，将其放到飞机的加压舱内。

制成的涂片、触片、玻片上注名号码，并另附说明。玻片两端用细木条分隔开，层层叠加，底层和最上一片，涂面向内，用细线包扎，再用纸包好，在保证不被压碎的条件下运送。

所有样品都要贴上详细标签。 附录A (规范性附录) 待检样品保存液的配制 A.1阿(Alserer)氏液

葡萄糖

2.05g 柠檬酸钠(Na3C6H5O7·2H2 O)

0.80g 氯化钠(NaCl)

0.42g 蒸镏水(或无离子水)

加至100mL 溶解后，以10%柠檬酸调至pH为6.1分装后，70kPa 10 min灭菌，冷却后4℃保存备用。

A.2 30%甘油盐水缓冲液

甘油

30mL 氯化钠

4.2g 磷酸二氢钾

1.0g 磷酸氢二钾

3.lg 0.02%酚红

1.5mL 蒸馏水

加至100mL

4 加热溶化，校正pH值为7.6，100 kPa 15min灭菌，冰箱保存备用。 A.3肉汤(broth) 牛肉膏

3.5g 蛋白胨

10g 氯化钠

5g 充分混合后，加热溶解，校正pH为7.2～7.4，再用流通蒸气加热30min，用滤纸过滤，获苗黄色透

明液体，分装于试管或烧瓶中，以100kPa20min灭菌。保存于冰箱中备用。

第三篇：电子内镜故障预防及排除方法体会

广西贵港市中医医院 朱竹兰(537100)

【摘要】 目的 探讨电子内镜使用出现的问题及排除方法。 方法 通过整理统计我院2010年3月—2015年5月对富士能电子内镜使用中出现的常见故障状况及排除方法。 结果 设备正常运转，提高工作效率，节约维修成本，满足临床诊疗需求。结论 在消化内镜诊疗工作中，内镜护士不仅要熟练配合医生的诊疗工作、掌握规范的清洗消毒流程和维护保养内镜常识，而且慎独意识的培养至关重要。 【关键词】 电子消化内镜 故障 维护保养 慎独意识 1.一般资料

我院2010年3月购置富士能99系列电子内镜主机1台，胃镜2条，肠镜2条。开展胃肠镜检查术、 活体组织取材术、息肉摘除术、取异物术、钛夹止血术、氩离子束凝固术等共12858例，其中胃镜9386 例、肠镜3472例，每天完成7-12例胃镜、2-7例肠镜不等。5年来共发生肠镜孔道堵塞7例，蛇管断裂并导致肠镜漏水1例，胃镜未出现明显故障。 2.常见故障及原因分析

2.1 送气送水不畅：气、水由先端部金属喷嘴喷出，喷嘴呈7字型，口径狭窄约2毫米，很容易被黏液、血液、粪渣、蛋白质结晶物所堵塞;先端部不小心与硬物碰撞导致喷嘴损坏或变形;其他：如内镜LG连接部与主机连接不良、气泵开关在“关”位置上、储水瓶没有连接或瓶盖密闭性差、储水瓶水用完或装水太满。

2.2 吸引不畅：吸引器管路连接不良、内镜未与吸引器连接、负压不符要求、吸引按钮堵塞或安装不到位、内镜吸引管道堵塞。其它：泵开关在“关”位置上、未盖上活检孔帽。

2.3 内镜漏水：内镜漏水严重的会导致电子内镜图像出现不良现象甚至引起电路板短路烧坏CCD，它是电子内镜的“心脏”部分，维修成本很高;还可能会引起纤维镜像束出现龟裂或彩虹现象视野模糊;光束变硬变脆,容易折断,亮度减弱;螺旋管脱落,打角度镜身蛇形;电子镜开关按键短路不能使用其功能等故障【1】。原因主要有内镜橡皮老化龟裂、活检钳或其他附件通过钳道不顺利时强行通过、内镜与活检钳异物钳等尖锐物件一起清洗导致橡皮被划破、内镜不小心掉地或受到碰撞敲击、受检者咬伤镜子、口垫内壁不光滑或爆裂擦破镜身表皮等。

2.4 蛇管蛇骨节损坏：主要是医生过度调节方向扭或动作粗暴所致。 2.5 图像模糊：一般为物镜粘有污物所致。 3.预防及排除方法

3.1 送气送水不畅的预防及排除方法

①初学医生肠镜操作时间往往超过30分钟甚至1个小时都无法完成全大肠检查，大大增加送水送气孔道堵塞的可能性，可以提醒医生操作过程中凡是吸引后立即注水冲洗管道。如果操作者技术娴熟，建议其需要吸引时应同时按压吸引按钮和注气注水按钮，以防止污水污物逆行进入注气注水管腔。

②使用后内镜进行床边反复多次注水注气，及时清理检查过程中进入到喷嘴的黏液、血液、粪渣、组织碎片等。

③内镜床边初步清洗后立即送清洗间规范清洗，防赃物凝固在喷嘴里，清洗过程要注意观察喷嘴出水量 及力度以便判断有无堵塞或部分堵塞。如水柱明显分散提示喷嘴部分堵塞，应放置在约400C的温水酶液(按 说明配置浓度的2-3倍)中浸泡30-60分钟，再用20ml注射器抽取酶液多次加压冲洗，直至通畅。切不 可把半堵塞的内镜放入戊二醛消毒液浸泡消毒造成不可逆堵塞(蛋白质凝固结晶)，也不可用针挑，否则 会导致内部管道更易堵塞或损坏喷嘴发生内镜渗漏。

④稳拿轻放，防跌倒或内镜挂不稳掉地，运送镜子避免镜身大幅度晃动导致先端部碰到地面、墙壁等损坏 喷嘴或变形。

⑤储水瓶盖旋紧，确保密闭性，储水瓶装水不宜过满，1/2~2/3满为宜，主机与内镜接头要连接到位。 3.2 吸引不畅的预防及排除方法

①操作过程中出现无法吸引或吸引困难时首先检查吸引管路连接是否正确及瓶盖密闭性能，负压范围在 40kpa~53kpa之间(当负压过大可能会造成粘膜受伤，过小又会造成吸引受限)，储液瓶内液体超过2/3 及时倾倒，防止溢流阀关闭，确定泵开关在“开”位置上，活检孔帽及吸引按钮安装到位。如上述均无 问题，则应考虑内镜活检管道或吸引按钮小孔堵塞。

②在确认吸引器功能正常情况下可用50ml注射器注水或注气畅通活检管道，畅通后若仍无法吸引，应 卸下吸引按钮检查有无粪渣、血凝块、组织碎片等堵塞，如有，清除干净或更换按钮即可。

③给病人预约肠镜时应详细交代注意事项，确保肠道准备充分，避免操作中过度吸引粪水导致堵塞。 3.3 内镜漏水的预防及应对方法

①内镜用后应立即规范清洗，防残留物滞留过久造成插入部表皮老化龟裂。对橡皮老化的内镜更应注重 维护保养，及时发现橡皮裂痕。最好检查前进行测漏，把测漏仪连接内镜，注气到规定仪表压力范围， 静止观察30秒至1分钟，如仪表指针不下降或下降不超过两刻度说明无渗漏，也可把整条内镜浸没清 水中，测漏仪注气到规定仪表压力范围，不冒水泡说明无渗漏。

②活检钳或其它附件通过内镜活检管道不顺禁忌强行通过，可先将角度钮放松，将器械从管道孔送出后 再调角度，尽量减少对钳道内壁的磨损。

③内镜清洗消毒过程中不能碰到活检钳咬合面等其它尖锐器械，以免划伤刺穿内镜橡皮造成漏水。 ④工作中对内镜要做到稳拿轻放，忌掉地、重压或碰撞。

⑤操作中注意固定好口垫，麻醉中病人出现躁动时防病人咬伤及拉扯镜子。可重复消毒使用的非一次性 口垫要注意检查内壁是否光滑，有内壁开裂、磨损的不得使用，避免刮破内镜表皮。 ⑥每天检查结束收镜子时例行测漏，及早发现问题早检修能挽回重大损失。 3.4蛇管蛇骨节损坏预防及应对方法

①操作者在调节角度的过程中要避免用力过猛，应缓慢调节，避免调节过后再返回，在观察位置改变不 大的情况下，也可通过转手或转身来实现，尽可能少调节角度，这样可延长钢丝的使用寿命。【2】

②护士在洗镜及维护保养时忌人为打直先端部，必须使用角度扭调节，镜身打弯不能出现锐角，盘曲直 径大于20cm。

③如出现调节角度不灵状况，应检查角度扭操纵杆是否处在关闭位置上，打开后仍调节不灵活，则考虑 蛇管或调节角度扭钢丝出现问题，只能通知工程师维修。 3.5 图像模糊的预防及应对方法

①操作中出现图像模糊时多次注水可去除镜面污物，如无法去除，应停止操作并退镜，用内镜专用清洁油或无水酒精擦拭镜面后图像仍无改善则应考虑内镜漏水，测漏确定后及时送修。如果处理不及时,就会使图像产生永久性的斑痕,影响诊断，甚至造成CCD的损坏,付出高昂的代价【3】。

③在每日工作结束后，保养风干镜子时应检查镜面清洁度及有无破损，常规擦拭镜面一次。 4.体会

电子内镜是一种可重复使用且昂贵易损坏的精密仪器，直接为人的生命和健康服务。接触镜子机会最多的是洗镜护士，大多二级以下基层医院，内镜室仅备配一名护士，集操作、洗镜、麻醉复苏、管理于一身，工作繁琐、脏累，且环境封闭，单独操作机会多，能自觉按流程操作并尽心做好内镜维护保养工作的护士应当具备慎独意识，提高道德水准，从而规范和约束自己的行为，保证诊疗安全，有效维护医患双方权益。因此，内镜室应配备有敬业、责任心强的专职护士，不仅要熟练掌握专业技能及做好感染控制工作，防止交叉感染，而且还要掌握内镜构造、性能及常见故障的预防和排除方法，精心做好内镜维护保养工作，重在预防，及时发现故障及时排除，尽量延长内镜使用寿命，节约维修成本，提高经济效益。 参考文献

【1】陈基明, 张连强，田晓东.电子内窥镜的使用和维护[J]. 设备运行与保障,2010,25(5)：97-98. 【2】李向红,唐伟,张德昌.电子内窥镜的工作原理和维护保养[J].医疗设备信息,2007,22(7):94-95. 【3】方萍.电子内镜的常见故障及预防[J].中华消化内镜杂志，2003，20(1)：65-66.

第四篇：生物复习方法

浅谈提高生物成绩的方法

初三生物

黄伟

我作为一名中学生物教师，从事生物学教学有四年的时间。在四年的教学中，我有机会听了不少生物教师的复习课，从中吸取了许多先进的经验和做法，同时我也发现许多不尽人意的地方。我们知道平时教学像栽活一棵树，复习似育好一片林。栽活一棵树容易，育好一片林要花功夫。如何上好复习课，提高复习质量，最大的限度地取得复习效果。这一直是我们在复习阶段最困惑的，也是最急需解决的。那么，生物教师应如何针对不足上好复习课，提高复习质量呢?我认为应从以下几个方面做起：

一、调整心态面对现实，发挥主观能动性。

学生总体上基础和能力有的好有的较差已是事实，一味地埋怨是解决不了问题的。关键是我们要敢于面对这个现实，，用积极的态度去对待，发挥主观能动性，找出学生的实际问题和解决的方法。不仅老师要这么想这么做，还要教育学生也这么想这么做，让学生明白，只要我们敢于面对困难，师生同心，紧密配合，就一定能取得好成绩。

二、科学地制订一个全盘的复习计划。

复习前必须要有周密的科学的计划才能高效地完成我们的教学目标。因此我在复习之前，都会制定出详细的复习计划。比如每个阶段的复习要达到什么目标、做什么、怎么做、时间安排、用何资料等等都必须计划好。同时向学生说明，让学生心中有数，自觉配合老师，做好教与学同步，发挥共振的功效。现粗略地介绍一下我的复习计划。第一阶段，基础内容复习;目标是对考试范围的基本知识和基础技能进行全面复习，能力以理解和记忆为主;方式以讲授和记忆为主，练习为辅，时间比为2：1;资料是学案、自编练习题。第二阶段：内容综合复习，目标是对各单元有联系的知识加以综合，训练学生对部分知识综合运用的能力;方式是专题复习，解题方法指导，综合训练，时间比为1：1;资料是《生物学总复习》。第三阶段：内容应试训练;目标是培养学生在考试各个环节的应试能力、技巧和心理素质;方式是模拟考和评讲，时间比为2：1;资料是各地中考模拟题、自编模拟题。

三、讲求教学方法提高效率。

1、做好学习和复习方法的指导。好的复习方法可收到事半功倍的作用，因此在教学复习过程中我十分重要对学生学习方法的指导，包括如何制订学习计划、如何掌握学习各个环节的学习技巧(阅读技巧、记忆方法、概括知识的方法、向老师提问的技巧等)、如何运用时间、知识的重点、难点、各类题型的解答方法、考试过程的常见失误与对策等。学生掌握了学习方法，学习起来就会主动、轻松，就有针对性，学习效果自然就大大提高。

2、提高课堂40分钟的效率。教师必须要提高生物课堂的效率，力求40分钟内解决问题。课前作好充分准备，包括分析考纲、教材、教学参考资料、堂上练习、电化教具、小黑板、生物模型与挂图等。使堂上教学的信息量增大，加上生动的语言表达，理论联系实际，讲练结合，便能使直观性、趣味性和知识性有机地结合起来，激发学生的兴趣，学生的注意力也容易集中，这样学生就在轻松、活跃的课堂气氛中，不知不觉地掌握了知识。可我们在这里都存在一个误区，认为复习阶段就不需要教具了，只要给学生时间让他们记忆需要记住的知识就行了。从而忽略了对教具的运用。殊不知长此以往学生便对复习课失去了兴趣，认为复习课就是背 ，从而出现消极应付以至于影响复习效果。

3、全面复习、突出重点。从历年生物会考试题来看，章节知识覆盖率均在90%以上，所以基础复习必须全面。但又不能平均主义，尤其是今后的试题逐步以知识立意转化能力立意，不太强调覆盖面，因此必须在全面复习的基础上突出重点。会考复习重点在哪里?根据本人对历年会考试题的统计分析得出的结论：重点就在初一《生物学》的种子植物光合作用呼吸作用蒸腾作用，花和果实，初二《生物学》的循环系统和神经系统，初三《生物学》的昆虫纲，鸟纲，鱼纲，遗传变异和生物与环境。上述在会考试题所占的比例很高。可谓“兵家必争之地”，必须在复习教学中给予最大的重视。

4、强化训练。从信息论的原理来看。学习主要是信息输入、贮存与输出三个过程组成。信息输入包括听课、阅读和理解、信息的贮存靠记忆实现，信息的输出是指知识的再现和运用。三个过程关系密切、缺一不可，但考试主要是通过信息的输出来实现。因此要提高考试的成绩，平时就必须加强对知识输出的训练。我对学生的强化训练主要有三种方式：①在平时的练习中进行强化训练，即把平时的训练当考试。在规定的时间内、独立、闭卷完成，途中不能查阅书本和答案，直到所有学生认为会做的题目完成后才能对答案，看书、讨论或问老师。这样有利于保持思维的连续性，提高反应速度和熟练程度，消除对课本和答案的依赖，培养自信心，同时减少因重复翻阅答案而消费的时间。②在课堂小测时，不写题目，而是口述题目，学生必须听清题目、记住有关问题和供选答案，口述一题马上答一题，目的是强化学生的记忆力和反应速度。③在考试时加大题目量、难度和能力要求，缩短考试时间，以提高学生的应变能力和心理承受力。

5、做好教学反馈和补救工作。教学的反馈与补救是教学的一个很重要的环节，做得好能体现教师对学生的关心，有利于师生感情交流与培养，增强学生克服困难的信心，提高学生对教师信任，促进学生主动配合教师，提高教学复习的效果。所以,平时我主动多辅导或找学生谈心,了解教与学的情况，了解学生的思想和心理状态，倾听学生对教学的意见和建议，做好辅导，及时帮学生解决学习上和心理上的问题(每学期每位学生至少一次)。每次测试都做好考试分析，找出学生存在的问题，并做好评讲。评讲时分三个层次进行，第一是使学生知识什么是对的，什么是错的，为什么;第二是通过某个错误找出学生在知识的背景上到底存在什么本质的问题;第三，解题的思路和方法，并对题目进行扩展或变形、举一反三。

四、注重会考复习的信息收集、分析与交流。

当今社会发展进入了信息时代，信息已在各种社会活动中占据了主导地位,会考复习也不例外。信息把握准确，方面明确，针对性强，复习效率就高，因此必须注重会考信息。

第一、注意有关报刊和杂志。平时要经常查阅这些资料，及时做好有关信息的收集。 第

二、重视上级传达的有关信息，加强与兄弟学校之间的信息交流。

第三、重视对《考试说明》的研究,重视对历年会考生物试题的分析和比较,从中发现试题的特点和变化趋势，最大限度地掌握命题的有关信息，研究复习教学的对策，准确地指导学生进行复习、避免盲目性、提高复习的效果。

总之，我们要在教学中做个有心人，要善于总结教学中点滴经验得失，才能不断地提高自己的教学质量适应新的教学要求。

第五篇：高一生物课件指导：生物教学方法

生物对文科的学生来说，并不是一门重要的课程，因为不是高考科目，仅仅通过会考就可以。由于这个原因，学生普遍对生物这门课程不重视，大部分学生上课不听讲、开小差。对于教师来说，却不能放任，总想方设法让学生听课、使学生对自己的课程产生兴趣，确实是一件较难办的事。经过在实验中学的几个月，我有了一些体会：首先，师生关系要融洽。大部分学生自控能力较差但自尊心很强，所以有些事情老师应该以一个理解的态度去谈，而不是劈头盖脸一顿训斥。谈好了固然皆大欢喜，谈不好也不会故意不听课给你捣乱。

还要多与学生沟通、聊聊，学生感到这个老师不错，上课认真听课的人数也就会多了。其次，教学内容难度要适中。文科班的学生，理科科目的基础较差，根本无法跟理科班的学生相比。如果教学内容太难，那么，他们对你这门课刚提起的一点点兴趣，就会因为什么都听不懂而消失殆尽。于是，上课时睡觉、讲话、开小差的现象随之而发生。

因此，在课堂教学中，对学生的要求不能太高，要特别注重学生的实际水平，根他们的接受能力来讲解教学内容。第三，语言尽量通俗易懂，多举些实例。生物课程与其他课程有些不同，虽然也是些理论知识，但与日常生活联系比较紧密。所以，基于这一点，我在课堂教学中，把书本中一些专业化的语言、术语，用比较通俗的语句加以解释，尽量使学生都能够听明白、听懂。

再则，我也比较注意收集一些与教学内容有关的、日常生活中的实例，在课堂中传递给学生，一来吸引学生的注意力，二来使学生理解掌握书本的内容。比如讲到脂肪不容易被分解供能的地方时，随带说一下增肥容易减肥难的原因，就会吸引很多的学生听课，同时一些知识也就掌握了。现在很多文科班的学生给我的评价就是“讲课很有意思”。当然还要注意在有意思的基础上别忘了传授知识的根本。

当然，在实际教学工作中还存在着很多问题：教学中有很多枯燥的知识学生是听不进去的，而由于知识的积累不够，没有办法开展开来，这就需要我多查一些生物学上的知识资料等，不断丰富自己;还有就是课外话题的开展注意范围与时间，教学任务是必须要完成的，不能因小失大，这需要自己控制，严格把关。总之，我会努力，理科成绩要上，文科照样带起。