生物样本采集方法

第一篇：生物样本采集方法

生物医学信号采集实习

课程设计报告

心电信号采集

指导老师：

学号： 姓名： 学号： 姓名： 学号： 姓名：

起止日期：

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目录

一、 前言 ———————————————————— 3

二、 心电信号简介 ———————————————— 3

三、 实验要求 —————————————————— 5

四、 软件设计及仿真 ——————————————— 6

五、 硬件电路及仿真 ——————————————— 12

六、 人体测量结果 ———————————————— 13

七、 实验总结 —————————————————— 14

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一、前言

心脏是人体血液循环的动力泵，心脏搏动是生命存在的重要标志，心脏搏动节律也是人体生理状态的重要标志之一。心电信号是心脏电活动的一种客观表示方式，是一种典型的生物电信号，具有频率、振幅、相位、时间差等特征要素，比其他生物电信号更易于检测，并具有一定的规律性。由于心电信号从不同方面和层次上反映了心脏的工作状态，因此在心脏疾病的临床诊断和治疗过程中具有非常重要的参考价值。对心电信号的采集和分析一直是生物医学工程领域研究的一个热点，是一项复杂的工程，涉及到降低噪声和抗干扰技术，信号分析和处理技术等不同领域，也依赖于生命科学和临床医学的研究进展。

人体体表的一定位置安放电极，按时间顺序放大并记录这种电信号，可以得到连续有序的曲线，这就是心电图。心电信号的各种生理参数都是复杂生命体(人体)发出的强噪声条件下的弱信号(除体温等直接测量的参数外)，心电信号的幅度在10µV～4mV之间，频率范围为0.05～100Hz，淹没在50Hz的工频干扰和人体其他信号之中，检测过程及方法较复杂。去除信号检测过程的干扰和噪声、进行心电信号的分析是心电仪器的重要功能之一，心电信号的放大质量直接影响着分析仪器的性能和对人体心脏疾病的诊断。本次设计了一个心电信号检测放大电路，充分考虑了人体心电信号的特点，采用三导联输入—前置放大电路—带通滤波电路—次级放大电路组成的模式，并且利用软件对相应的电路进行仿真，实验结果表明，电路能够很好地完成人体心电信号的检测放大。

关键词：AD620、TL082CP、OP07CP、LM3

58、陷波、右腿驱动、NI ELVIS

二、心电信号简介

1.心电图

心肌是由无数个心肌细胞组成，由窦房结发出的兴奋，按一定的途径和时程，依次向心房和心室扩布，引起整个心脏的循环兴奋。心脏各部分兴奋过程中出现的电位变化的方向、途径、次序、和时间均有一定的规律。由于人体为一个容积导体，这种电变化也必须扩布到身体表面。鉴于心脏在同一时间内产生大量的电信号，因此，可以通过安放在身体表面的胸电极或四肢电极，将心脏产生的电位变化以时间为函数记录下来，这种记录曲线称为心电图，如下图所示。心电图反映心脏兴奋的产生、传导和恢复过程中的生物电变化。心肌细胞的生物电变化时心电图的来源，但是心电图曲线与单个心肌细胞的膜电位曲线有明显的区别。ECG波形是由不同的英文字母统一命名的。

心肌是由无数个心肌细胞组成，由窦房结发出的兴奋，按一定的途径和时程，依次向心房和心室扩布，引起整个心脏的循环兴奋。心脏各部分兴奋过程中出现的电位变化的方向、途径、次序、和时间均有一定的规律。由于人体为一个容积导体，这种电变化也必须扩布到身体表面。鉴于心脏在同一时间内产生大量的电信号，因此，可以通过安放在身体表面的胸电极或四肢电极，将心脏产生的电位变化以时间为函数记录下来，这种记录曲线称为心电图，如下图所示。心电图反映心脏兴奋的产生、传导和恢复过程中的生物电变化。心肌细胞的生物电变化时

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心电图的来源，但是心电图曲线与单个心肌细胞的膜电位曲线有明显的区别。ECG波形是由不同的英文字母统一命名的。正常心电图由一个P波、一个QRS波群和一个T波等组成。P波起因于心房收缩之前的心房极时的电位变化; QRS 波群起因于心室收缩之前的心室除极时的收位变化;T波为心室复极时的电位变化，其幅度不应低于同一导联R波的1/10，T波异常表示心肌缺血或损伤。ECG的持续时间由：P-R间期(或P-Q间期)为P波开始至QRS波群开始的持续时间，也就是心房除极开始至心室除极开始的间隔时间，正常值为0.12～0.20s，若P-R 期延长，则表示房室传导阻滞;Q-T间期为 QRS波群的开始至T波的末尾的持续时间，意为心室除极和心室复极的持续时间，正常值为 0.32～0.44s;S-T段为从QRS波群终末导T波开始之间的线段，此时心室全部处于除极状态，无电位差存在，所以正常时与基线平齐，称为等电位线，若S-T段偏离等电位线一定QRS波群持续时间正常值约为0.06～0.11s范围，则提示心肌损伤或缺血等病变;因此，实时的检测心电信号，可以从所得出的心电图上观察心脏的变化，医生就可以从所测的心电图上判断心脏各个部位的功能是否正常，所以心电图是医生治疗心脏方面的疾病所不可或缺的依据。因此心电检测就有了实际应用的意义。

图1 标准心电图图例

2.人体心电信号的干扰

人体心电信号是一种弱电信号，信噪比低。一般正常的心电信号频率范围为0.05-100Hz，而90%的心电信号(ECG)频谱能量集中在0.25-35 Hz之间。采集一种电信号时，会受到各种噪声的干扰，噪声来源通常有下面几种：

(1) 工频干扰50 Hz工频干扰是由人体的分布电容所引起，工频干扰的模型由50Hz的正弦信号及其谐波组成。幅值通常与ECG峰峰值相当或更强。

(2) 电极接触噪声,电极接触噪声是瞬时干扰，来源于电极与肌肤的不良接触，即病人与检侧系统的连接不好。其连接不好可能是瞬时的，如病人的运动和振动导致松动;也可能是检测系统不断的开关、放大器输入端连接不

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好等。电极接触噪声可抽象为快速、随机变化的阶跃信号，它按指数形式衰减到基线值，包含工频成分。这种瞬态过渡过程可发生一次或多次、其特征值包括初始瞬态的幅值和工频成分的幅值、衰减的时间常数;其持续时间一般的1s左右，幅值可达记录仪的最大值。

(3) 人为运动,人为运动是瞬时的(但非阶跃)基线改变，由电极移动中电极与皮肤阻抗改变所引起。人为运动由病人的运动和振动所引起，造成的基线干扰形状可认为类似周期正弦信号，其峰值幅度和持续时间是变化的，幅值通常为几十毫伏。

(4) 肌电干扰(EMG),肌电干扰来自于人体的肌肉颤动，肌肉运动产生毫伏级电势。EMG基线通常在很小电压范围内。所以一般不明显。肌电干扰可视为瞬时发生的零均值带限噪声，主要能量集中在30-300Hz范围内。

(5) 基线漂移和呼吸时 ECG 幅值的变化 基线漂移和呼吸时 ECG 幅值的变化一般由人体呼吸、电极移动等低频干扰所引起，频率小于 5 Hz;其变化可视为一个加在心电信号上 的与呼吸频率同频率的正弦分量，在 O.015-O.3Hz 处基线变化变化幅度的为 ECG 峰峰值的 15%。

三、实验要求

1.实验仪器设备：

1) 作图工具：TINA原理图编辑器

2) 仿真工具：使用Multisim交互式地搭建电路，然后仿真。 3) 电路图实验设计：面包板

4) 电路测试：使用NI ELVISmx提供电压，显示电路数据。

2.设计要求

体表心电信号是微弱信号，极易受到干扰，心电前置放大电路设计要求尽可以将外界干扰排除，再通过ELVIS平台传到上位机做数字信号处理和显示。要求完成以下技术指标

(一) 电路的放大倍数：800~1000倍。 (二) 电路的共模抑制比：大于75 (三) 电路的输入阻抗：大于20M (四) 电路的信号的频率响应范围：0.05~120Hz

我们要设计的是三导联。心电前置放大电路一般会由两~三级组成，第一级是CMRR很高的差动放大电路，主要用来抑制共模干扰，比如工频电场干扰，但这一级放大倍数一般在10倍左右(为什么这么设定，请大家思考并查资料，采用什么电路方式来提高共模抑制比也可以查资料)。第二级通常是一个两阶低通滤波和放大10倍左右的电路。(请大家去找到合适的两阶滤波器电路，并选用合适的电容与电阻)。最后一级通常是可调放大倍数的放大电路，并提供一个低内阻的输出级。高通滤波一般在前端采用无源的一阶滤波器。

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四、软件设计及仿真

1、前置放大电路和右腿驱动电路的设计

(1)前级放大电路是将采集到的心电信号直接放大，该信号包含了很多背景噪声以及较高的共模信号，若这些干扰信号也随着心电信号一起被放大，将导致心电信号完全被湮没在噪声信号中，因此前级放大电路是关键，它必须满足高输入阻抗，高共模抑制比，低噪声，低漂移等特点。因此选用仪用放大器AD620，它采用经典的三运放改进设计，只需要一个电阻就能实现对增益的调节。它具有较高的输入阻抗和共模抑制比，能够很好地达到要求。对于前级放大的增益不宜过大，否则会使干扰信号过强，不利于后期处理。

(2)右腿驱动电路专为针对50Hz工模干扰，提高CMRR而设计的，原理是采用人体为相加点的共模电压并联负反馈，其方法是取出前置放大级中的共模电压，经驱动电路反相后在加回体表上，一般做法是将此反馈信号接到人体的右腿上，所以称为右腿驱动。通常，病人在做正常的心电检测时，空间电厂在人体产生的干扰电压以及共模干扰是非常严重的，而用右腿驱动电路就能很好地解决了上述问题。

图1 前置放大电路

由电路图1可知1脚和8脚之间的等效电阻RG20k6.67k，根据

3G49.4k1可得，该电路的增益RGG=8.41，其中电阻R

1、R2的匹配性会直接影响到该放大电路的共模抑制比，因此要尽量保持阻值的相等。

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图3 仿真结果

由图3仿真结果可以看出，输入1mV，40HZ的交流电压后，经AD620芯片 放大测量出的信号值达到12mV左右，有效值为8.64mV，即实际放大倍数为8.64倍，与理论值相近。

2、滤波电路的设计

因为电路所要求的频带范围为0.05Hz到100Hz，由于纯粹的带通滤波器的幅频特性不好控制，因此选择低通和高通两个滤波器串联，形成一个带通滤波器。低通滤波器的截止频率为100Hz，高通滤波器的截止频率为0.5Hz。在芯片选择方面，由于运放本身的频带范围会影响所做滤波器的特性，因此选择频带范围较宽的TL082做为滤波器的运放。TL082是一种通用的J-FET双运算放大器，能够用一个芯片来完成低通和高通滤波。我们采用二阶的滤波器，虽然滤波阶数越高，滤波效果越好，但是，滤波阶数过高了就会提高成本，而且阶数越高滤波电路结构会更加复杂，调试也更加有难度。二阶低通滤波相对于一阶来说，其滤波性能

1更加稳定，效果更好。图1为滤波电路。根据公式f得，截止频

2R1R2C1C2率分别为49Hz和0.08Hz，并其增益都为1。

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图1 带通滤波电路图

通过过对实际信号的滤波来检验滤波器的特性，心电信号是属于低频信号，则前级要放大的信号必定为低幅值、低频率的信号，由于信号的幅值和频率都很小，更加容易受到噪声的影响。在经过高通和低通滤波之后，可以看出滤波器在截止频率范围内提供了有效的滤波。

3、主放大电路设计

整个电路的放大部分主要由主放大来承担，由于前级的放大倍数为8.6倍，因此将主放大的倍数定在100倍，整个电路总的增益为860倍(陷波器的增益不包括在内)。这部分利用低偏置电压的TL081CD来承担。反向输入端的1K和100K的电阻决定100倍增益，同相输入端利用100K电阻平衡两端电压，增大共模抑制比。如图1所示：

图1 主放大电路仿真图

在同相输入端输入60Hz,1mV Vpp的正弦信号，经运算放大器放大后在6号脚测到信号Vpp约为10.1V，如图2所示：主放大电路的实际放大倍数大约在100倍，与理论值的误差是由芯片本身的特性以及电阻的失配引起。

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图2 主放大电路仿真结果

4、50HZ陷波器的设计

由于测得的心电信号中夹杂了工频干扰，难以去除，并且干扰信号的幅值与心电信号相近，严重影响了心电信号的识别，因此在对信号进行第二级放大时采用了一个陷波器，用于除去工频干扰。该陷波器的中心频率为50Hz，并且具有1.5倍的增益。50HZ陷波电路电路图如图1所示：

图1 陷波电路

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图2 仿真结果

理论上中心频率50Hz左右时有比较明显的衰减，而测量结果也跟理论相近，对于实际电路，采用频率50Hz，峰峰值为1V的，正弦信号进行测试，从图2中看出，经过陷波器之后，原本峰峰值为1V的信号，在1.5的增益下应该为1.5V，实际测得的增益为由于是50Hz的信号，衰减至0.1V，效果较明显。

5、总体电路设计

图1 心电采集设计框图

电路设计中最重要的是抑制信号中噪声的产生及对噪声信号的滤除，使其对心电信号本身的影响达到最小。本次实验中心电信号选择为0.5至100Hz之间的频带。因为心电信号幅值大致都在1mV至3mV之间，电路供电电压为±5V，因此选择放大倍数为800至1000倍。总的电路图设计如图2所示：

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图2 心电采集电路总图

图3 仿真结果

理论上的放大倍数计算得出，前置放大倍数为8.41倍，主放大倍数为100倍，所以总体放大倍数约为841倍。然而从图3的仿真结果看出，实际前置放大倍数约为7.57倍，这是因为带通滤波模块会衰减一部分信号，使总体的放大倍数减小，仿真实验到此成功结束。

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五、硬件电路及仿真

1、前置放大电路

在面包板上搭建了以AD620为中心的差动放大电路以后，用NI ELVIS软件仿真，输入一个频率为25Hz，峰峰值为1V的正弦信号，得出的结果如图1，可看出峰峰值放大了8倍左右，与软件仿真结果相近。当共模输入信号时，测得的共模增益小于0.001，如图2所示。

图1 前置放大电路测试结果

图2 共模输入测试结果

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2、带通滤波电路

用一个低通滤波电路和一个高通滤波电路搭建好一个带通滤波电路，软件仿真计算出的带通截止频率在0.08Hz-49Hz之间，但由于是实际的电路做不到理想化，所以信号从30Hz就开始衰减，如图1所示。

图1 带通滤波器测试结果

3、50Hz陷波电路

图1 陷波测试结果

图1可看出在中心频率为51Hz左右时的信号有明显的衰减，由于阻值的选择不同，所以测试结果与软件仿真结果存在一定的误差。

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4、后级放大电路

图1 后级放大测试结果

搭建好电路以后，测试得出图1的结果，由图可看出，后级放大倍数在110倍左右，与理论值的误差是由芯片本身的特性以及电阻R4和R5的失配引起。

5、总体电路

图1 差模输出 图2 共模输出

输入为25Hz，10mV的正弦波。采用差模输入时，输出为11.13V左右，放大1113倍采;用共模输入时，输出为1.59mV，放大0.16倍。 由公式CMRR10log(Ad2)可得，整个电路的共模增益为76.8dB。 Ac

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六、人体测量结果

图1 实际测量结果

在实际测量时，电极贴的位置及个人的皮肤状况也会影响测量结果。可以用清水湿润皮肤，并用砂皮磨掉表面的死皮，这样会使测量效果更加。同时被测人的体质不同也会对测量结果有影响。

图2 实际电路图

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在面包板上完成上述电路的搭建，并对每一部分都进行单独调试。最终的电路实物图如图2所示。左上为前置放大，使用了AD620芯片，左下为右腿驱动电路，使用的芯片为TL082CP，中上和中部构成了一个带通滤波电路，使用了两个TL082CP，中下为陷波电路，使用的芯片为OP07CP,右下为第二级放大，使用了TL082CP芯片。在实际测量时，采用三导联的方式，一根接右腿，其余两个分别接左右手，若分别接左右胸口效果会更佳，由于不是很方便就采用接左右手腕的方式。

七、 实验总结

1、难点

(1)前置放大电路中抑制共模信号的调制。

(2)消除随机噪声、工频噪声、内部噪声的干扰。 (3)电路图的设计，芯片、电阻等元件的选择。

2、调试经验

(1)开始连接的电路没有加入50Hz陷波电路，但在实际测量中有大量的工频干扰，于是加入了该模块，结果有效地一直掉了工频干扰。

(2)原来选择的低通滤波起的阻值为11K，理论计算出的截止频率为97.6Hz，但实际测量中大量的干扰频率在50Hz左右，于是修改了阻值，改为33K，这样可以滤掉更多的干扰，有利于得出正常的心电图。

(3)第一次没有成功测出心电信号，经讨论才知道是因为前置放大器模块没有做好，导致大量的共模信号进入了电路，由于心电信号非常微小，就被这些干扰信号淹没了，于是修改了差分输入的阻值，选择了两个特别接近的阻值，以减小共模干扰，计算出前置放大器的共模抑制比在0.001dB左右，有效抑制了共模干扰，最终得出了正常的心电信号。

(4)虽然最后实验成功了，但是还是存在一些干扰信号，说明滤波这一块还需改进。心电测量电路中对噪声的消除是十分重要的。外界噪声很有可能在电路的任何一部分掺杂进来，所以在最后再加一个低通滤波器滤除高频噪声是必要的。 (5)电极的放置对心电的影响也很大，放在一个准确的位置可以很容易地从示波器上看到清晰的波形，反之，心电信号太过微弱会被噪声完全淹没。

(6)实验中，有源滤波器比无源的滤波效果要好很多。两个有源滤波器串联构成的带通滤波器也比无源和有源串联的效果好。

(7)对于电容的选择：在本次实验中，用瓷片电容的效果比电解电容要好一点。因为瓷片电容构成的滤波器滤除高频成分的性能好，电解电容构成的滤波器滤除低频成分的性能好。

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第二篇：临床微生物检验标本的采集

临床微生物检验标本的采集及微生物检验报告的解读 一 临床微生物检验标本的采集

1.临床微生物检验的思路和原则

确保标本可靠 ((分析前质量) 保证检验质量

全面了解机体的正常菌群 快速准确提供信息

微生物学的定性、定量和定位分析 结合病情，与临床联系

2.微生物结果的影响因素

2.1针对性的检验申请、病人准备、标本的采集、标本的运输 标本的保存和处理(46~68.2%); 标本检验 ( 4­15% ); 结果审核和批准、危急值报告(18.5­47%) 2.2正确采集、转运与保存微生物标本直接关系到致病微生物培养的正确性与阳性率，是从临床微生物检验获得正确结果的最关键一步。

2.3Garbage-In- Garbage-Out 不合格的标本-不正确的检验结果-错误的诊断-错误的治疗-卫生资源的浪费、病人费用增加、耐药菌株增加

2.4成功治疗感染症的重要前提: 正确的微生物学检验始自标本采取。否则工作人员水平再高也不可能得到正确的结果，临床医师、护士及检验人员都必须通晓其要领

3.标本采集前临床医师及护士要考虑的问题

3.1是否感染?细菌感染?真菌感染还是病毒、寄生虫感染? 3.2何时采集样本?

3.3采集什么样的标本?怎样采集?样本是否足量? 3.4采用哪种无菌容器或运送培养基采集标本?

3.5如何完善的填写标本申请单?针对某些特殊致病菌的排查要求应怎样写?(申请单信息越详尽，越有助于实验室出具符合临床情况的结果报告，如疑似诊断、准确的取材部位、甚至取样时用抗菌药物。) 3.6关键需要特别重视的问题：标本采集是否规范 ;标本保存、运送是否规范 ?;无菌体液培养重视与否?

4.微生物检查的样本收集原则：

4.1收集样本时应使用严格的无菌技术，将污染情形降至最低。

4.2收集真正感染的病灶处之样本，且不受到邻近区域微生物的污染。

4.3采用无菌卫材收集样本，并置于已贴有病患标签之坚固且密和性佳的容器中，将容器置于适当的储存环境待送。

4.4在病患感染的急性期、使用抗生素或伤口局部治疗前收集标本，成人应需氧瓶、厌氧瓶同时培养，以提高阳性检出率和避免漏检。

4.5样本不可添加防腐剂，以免干扰病原菌分离。

4.6于送检申请单上提供足够的有关临床资料(如姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等)，以便实验室能够合理选择培养环境和培养基;。 4.7即刻将样本送检，不可拖延，标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。不能使用冷藏的样本检验。

4.8实验室只能接受和处理合格标本;对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。 4.9厌氧菌样本采取必须隔绝空气，混入空气的样本影响检验结果，不能使用。

5.血液培养标本采集和处理：

5.1采血指征：

对入院危重感染患者应在未进行抗菌药物治疗之前，及时做血培养。一般患者出现以下一种体征时可作为行血培养的重要指征：

①发热(≥38℃)或低温(≥36℃);②寒战;③白细胞增多(计数>10.0×109/L，特别有“核左移”时);④皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭，血压降低;⑤C反应蛋白升高及呼吸加快;⑥血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，或同时具备上述几种体征时而临床可疑菌血症应采集血液培养。

新生儿可疑菌血症，应同时做尿液和脑脊液培养。 5.2皮肤消毒程序：严格执行以下三步法。 5.2.1 70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。

5.2.2 1%~2%碘酊作用30s或10%碘伏60s，从穿刺点向外划拳消毒，至消毒区域直径达3cm以上。 5.2.3 70%酒精脱碘：对碘过敏的患者，用70%酒精消毒60s，待酒精挥发干燥后采血。 5.3培养瓶消毒程序：①70%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用60s;②用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精。 5.4静脉穿刺和培养瓶接种程序：

5.4.1在穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可戴乳胶手套固定静脉，不可接触穿刺点; 5.4.2用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头(如果行第二次穿刺，应换针头)直接注入血培养瓶，轻轻颠倒混匀防止血液凝固。立即送检，切勿冷藏。

5.5采血量：

成人采血量是8~10ml，儿童1~5ml。血液和肉汤之比为1:5~1:10。 5.6血培养次数和采血时间：

◆根据研究，仅抽血培养1次分离率约占80%，培养2次的分离率约占90%，而培养3次的分离率约占99%。仅抽血培养1次，除了分离率低(其原因是菌血症常会暂时消失)外，且将很难评估病原菌是污染还是与感染有关。如果抽血培养2次或3次，则能够得到肯定。

◆采血培养应该尽量在使用抗菌药之前进行，24h内应采集2~3次做血培养(一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养)。入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3d，每天采集2份。对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5~1h采集血液，或于寒战或发热后1h进行。

5.7特殊的全身性和局部感染患者采血培养的建议：

◆可疑急性原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎，应在不同部位采集2~3份血标本。

◆不明原因发热，如隐性脓肿，伤寒热和波浪热，先采集2~3份标本，24~36h后估计体温升高之前(通常在下午)再采集2份以上。

◆可疑细菌性心内膜炎，在1~2h内采集3份血标本，如果24h后阴性，再采集3份以上的血标本。 5.8标本运送：

采血后应该立即送检，如不能立即送检，需室温保存或置35℃~37℃孵箱中，切勿冷藏。

6尿液标本采集和处理：

6.1采样原则：标本需在应用抗菌药物之前或停用抗菌药物5天之后留取尿液标本;尿液在膀胱内应停留6～8 小时以上，使细菌有足够的时间繁殖。一般以清晨第一次的中段尿为宜。 6.2采集方法：

6.2.1中段尿采集法：：成年男性和女性分别用肥皂水或1：1000 高锰酸钾水溶液清洗尿道口和外阴部，再用无菌生理盐水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，收集中段尿5～10ml 盛于带盖的无菌容器内送检。

6.2.2导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检;长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿;留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检(不可采集尿液收集袋中的尿液送检);

6.3送检：尿液收集后，盖上容器盖子立即送检，若无法及时送检，置于4℃冰箱中保存不可超过2小时。 6.4注意事项：

◆收集尿液过程中，请勿将手伸入容器内，且尿液勿满出容器外，以免污染。而以无菌导管技术

收集尿液(特别是女性患者)的方法，已被认为不适合，因易引发尿道感染。 ◆如果同份标本中检出3种以上不同种微生物，可能由于采样本时受到污染所致。

7.痰及下呼吸道标本采集和处理：

7.1采集要点：所采集的痰标本，必须真正能代表肺部之分泌物者，通常清晨时痰液最多，且可能含较多病原菌。 7.2采集步骤如下：

7.2.1以清水或牙刷清洁口腔及牙齿，不可用牙膏。

7.2.2指导病患从呼吸道深部咳出痰(不可含有唾液)，装于无菌容器内。咳痰较困难者可用雾化蒸气吸入以利痰液咳出。幼儿可用手指轻扣胸骨柄上方以诱发咳痰。 7.2.3气管下采集法：通常用于在给患者行纤维支气管镜时顺便抽取。 7.2.4气管穿刺法：仅用于昏迷患者，由临床医师进行。

7.2.5痰标本应以脓样、干酪样或脓性粘液样性质的痰液为合格标本，痰量应为3~5ml。 7.2.6无法及时送检的痰标本应置于4℃冰箱中保存待送。

7.2.7呼吸道标本采集方法：鼻咽拭子法，先用清水漱口，对光坐，头向上仰，口张大，用压舌板轻压舌根，用棉拭子在病人咽后壁，悬雍垂后侧涂抹数次.立即放入无菌试管中。

7.3痰TB菌涂片采集：痰涂片检查TB菌的初诊病人应送3份痰标本(夜间痰、清晨痰和即时痰);如无夜间痰在留清晨痰后2~3小时再留一份痰标本，或送两份即时痰;治疗中或复诊随访病人按期每次送检两份痰(清晨痰和夜间痰)。

7.4痰标本采集说明：即时痰为病人就诊时咳出的痰液;清晨痰为清晨深咳出的痰液;夜间痰为就诊前一天晚睡前咳出的痰液。痰标本应以脓样、干酪样或脓性粘液样性质的痰液为合格标本，痰量为3~5毫升。

8.泌尿生殖道样本：

8.1阴道、子宫及前列腺等分泌物：由医生采集，收集于无菌试管内送检。淋病奈瑟菌检查时，不论男女尿道及子宫颈均需用拭子插入尿道及子宫颈3cm深取样送检，要避免阴道分泌物污染拭子。

8.2未成年人：若怀疑年幼女童有淋病性阴道炎时，则标本由阴道外围部位取得。

8.3男性：男性怀疑有急性淋病时，则由尿道取分泌物样本作抹片及培养，若怀疑有慢性淋病，样本可由医生采自前列腺或精囊。

8.4注意：从冰箱取出之携送培养基，须先放至室温约半小时，使其恢复室温，因淋病双球菌对温度相当敏感。

9.脑脊液样本：

9.1采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最好是在应用抗生素之前采集脑脊液。 9.2采集方法：腰穿法收取脑脊液3~5ml，盛于无菌试管中，应立即送检，同时注意保温，不可置于冰箱保存。

10.粪便与直肠拭子样本采集和处理：

10.1采集时间：

10.1.1腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便; 10.1.2伤寒患者于发病2w以后采集粪便; 10.1.3怀疑霍乱时立即采集粪便送检。 10.2采集方法：

10.2.1自然排便法：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2～3g或1～2 m1，盛无菌容器内或置于保存液或增茵液内送检;若疑似霍乱者应置于碱性蛋白胨水中(pH8.6)。 10.2.2直肠拭子法：难以获得粪便或排便困难患者及幼儿可采用此法，将拭子前端用无菌甘油或生理盐水湿润,然后插入肛门约4～5cm(幼儿2～3cm)，轻轻在直肠内旋转。擦取直肠表面粘液后取出，盛于无菌试管中或保存液中送检。

11眼、耳、鼻、咽拭子培养标本：

11.1采集眼分泌物：先用无菌生理盐水冲洗眼部,然后用棉拭于拭干，再用无菌棉拭于采集分泌物。

11.2采集咽分泌物：先用清水撤口.用压舌板将舌向下向外压，将咽拭子在咽后壁或悬雍垂后侧涂抹数次，切勿接触口腔和舌粘膜。

11.3采集耳、鼻或鼻咽分泌物：直接用拭子涂抹病灶部位,切勿接触周围粘膜或皮肤。 11.4送检：标本采集过程中应注意避免粘膜上的正常菌群污染,标本采集后标明左、右眼(耳)或鼻咽部，连同拭子一起置无菌管内送检。

12.穿刺液样本：

12.1穿刺液培养标本：包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液等。

12.2采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2～3d采集标本。

12.3采集方法：

12.31无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本;

12.3.2标本采集量应>1ml(结核分支杆菌培养时应为l～5m1); 12.3.3标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中立即送检;

12.3.4可在盛器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固(0.5ml 肝素可抗凝5ml标本)。穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液及鞘膜液。

13.脓汁及创伤感染分泌物标本的采集：

13.1采集要点：对采集标本部位应首先清除污垢，再以碘酒或酒精消毒，防止皮肤表面污染菌混入影响检验结果，盛放标本器皿应无菌。

13.2封闭性脓肿患者病灶局部的皮肤或粘膜表面：先用碘酒消毒，再用75%酒精脱碘，以无菌干燥注射器穿刺抽取，将采集的脓汁注入无菌试管中。

13.3开放性脓肿和脓汁分泌物：在患部附近的皮肤或粘膜用无菌纱布或棉布擦拭，供培养用的标本尽可能从深部流出，如为瘘管可在无菌操作下取组织碎片。

13.4大面积烧伤的创面分泌物：由于创面的部位不同，细菌种类也不同，故应用无菌棉拭子采取多创面的脓汁或分泌物，置于无菌试管送检。注意事项：烧伤12 小时内的创面及分泌物中细菌检出率较低。

14真菌感染培养标本采集：

14.1浅部真菌感染标本采集：

14.1.1皮肤：常规消毒皮肤，从皮肤癣菌皮损边缘刮取鳞屑，置无菌平皿内送检，皮肤溃疡则采集病损边缘脓汁或组织;

14.1.2指(趾)甲：消毒指(趾)指甲并去掉其表面部分，取可疑病变部分，用刀片修成小薄片5～6 片置无菌容器内送检;

14.1.3毛发：采集根部断折处，至少5～6 根送检。 14.2深部真菌感染标本采集：

14.2.1血液：无菌采血8～10 m1，注入未用过抗生素的或可中和抗生素的血培养瓶中，立刻送检，如不能立刻送检时血培养瓶应放室温，但不可超过8~9h;

14.2.2脑脊液：采样量不少于3～5m1,分别注入两支无菌试管中送检(一管做真菌培养和墨汁染色一管测隐球菌抗原和其他培养) ;

14.2.4呼吸道及泌尿生殖道：其深部真菌感染标本采集同一般菌培养标本。

15厌氧菌感染培养标本的采集：

15.1标本采集：

15.1.1标本不能被正常菌群污染,采集时尽量避免接触空气,立即送检,严格遵守无菌操作; 15.1.2血液及其他体液(胸水、腹水、心包液、关节液、胆汁、脑脊液等)注入厌氧血培养,立即送检; 15.1.3深部脓肿,在病灶部位开放前取材,可用针管抽取,针头用无菌胶塞密封,也可用血气采集针抽取,立即送检;

15.1.4抽出液体标本后,要尽快排除注射器内的空气。 15.2标本运送：

152.1注意事项：标本采集后不得冰箱储存,必须尽快(半小时内)送实验室; 15.2.2运送方法:a 注射器运送(标本抽取后尽快排除空气)或接种道专门的运送培养基中直接运送;b 含运送培养基的无氧小瓶运送;c 厌氧罐运送(组织块);d 大量液体标本运送时要装满标本瓶兵立即驱氧,加盖运送;e 一般不采用棉拭子法

二 微生物检验报告的解读

1细菌室药敏试验中常选用的抗生素种类

氨基糖甙类：阿米卡星、庆大霉素 1代头孢：头孢唑啉 2代头孢：头孢呋辛钠

3代头孢：头孢他啶、头孢噻肟 、头孢吡肟( 马斯平) 单环 β-内酰胺类：氨曲南

广谱青霉素类：氨苄西林、青霉素G 、苯唑西林 抗假单胞菌广谱青霉素：哌拉西林

复方β-内酰胺类：阿莫西林-克拉维酸(奥格门丁 )氨苄西林-舒巴坦 (优力新)哌拉西林-他唑巴坦 (特治星)头孢哌酮-舒巴坦 (舒普深) 碳青霉烯类：亚胺培南、美罗培南 多肽类：多粘菌素E、替考拉宁 万古霉素 磺胺类：复方新诺明(甲氧苄唑-磺胺甲唑) 林可霉素类：克林霉素 大环内脂类：红霉素 氯霉素：氯霉素

三代喹诺酮：环丙沙星、氧氟沙星 左旋氧氟沙星、莫西沙星 四环素类：四环素 利福平

2.耐甲氧西林葡萄球菌(MRS)，

CLS I规定，葡萄球菌如对苯唑西林(或甲氧西林)耐药：对青霉素类、头孢菌素类、碳青霉烯类和含酶抑制剂的复方制剂均应报告耐药，而不考虑体外药敏结果。

3.耐高浓度庆大霉素肠球菌

CLS I规定，肠球菌引起的全身性严重感染 常联合应用 β-内酰胺类和氨基糖肽类抗生素 ， 如果肠球菌对高浓度庆大霉素耐药，则联合用药无效

三 与临床沟通中常见的问题

• 为什么微生物的报告时间这么慢? • 为什么培养回报有细菌而病人情况良 ? • 为什么送检的是脓痰却没有阳性结果 ? • 培养阳性的细菌都需要用抗菌药物治疗吗? • 选择药敏报告敏感的药物，为什么临床治病无效?

1.为什么微生物的报告时间这么慢

微生物的工作流程

细菌培养：接种标本，培养24~48小时

分离标本： 24~48 小时(需要时)

药敏： 18~24 小时 发结果： 阴性48小时

阳性?

真菌培养:因为生长缓慢，时间更长

2.涂片镜检结果与培养结果不吻合?

涂片镜检是报告所有检见的细菌，而培养的目的是检出致病菌。一些苛氧菌需在特殊的环境或培养基上才能生长。

3.尿培养结果报告“三种以上细菌混合生长”代表什么?

泌尿系统感染一般为一种细菌，有时可能有二种，但培养出三种或以上细菌说明标本污染，需要重新留取标本再做培养。

4.为什么培养回报有细菌而病人情况良好?

抗菌药物使用 或定植菌或污染菌

5.为什么送检的是脓痰却没有阳性结果?

5.1 是否送检前使用抗生素

5.2送检是否及时，痰涂片可能帮助判断 5.3 并不是感染性疾病，比如慢怚肺 、老慢支 等 5.4实验室操作不规范

6.为什么化脓性感染病灶中取脓汁培养阳性低

脓液是由坏死的组织和吞噬了细菌而死亡的白细胞组成，都是无任何营养的物质，而细菌一般都需要在高营养的环境中才能生长，另白细胞释放的溶菌酶对细菌有杀灭作用，因此，在脓液活细菌较少。 将脓液挤干净后在肉芽生长处取标本送检，如果化脓性病灶尚未破溃， 要用注射器穿刺到一定深度(肉芽附近处)取标本送检 。

7.明显稀便，培养结果为何正常 ?

大便普通培养，通常只能鉴定志贺菌、沙门菌感染，致病性大肠杆菌。 怀疑霍乱时，需开霍乱弧菌培养。 可能病毒感染(轮状病毒 轮状病毒) 8培养阳性的细菌都需要用抗菌药物治疗吗?

8.1.培养阳性感染：可能为污染菌 (血培养)， 可能为定植菌(痰)， )，任何结果必须结合临床情况进行评价-很重要

8.2.感染部位的清创，引流，换药比使用抗菌药物更重要

8.3.改善患者全身情况，器官功能支持，纠正酸碱电解质紊乱，低蛋白血症，高血糖等

9选择药敏报告敏感的药物为什么治疗无效?

9.1体外药敏试验只能预测体内治疗效果，并不完全等同 9.2.可能不是真正的致病菌 (污染或定植) 9.3.细菌本身因素(如诱导耐药 ，生物被膜)

CLSI中提示：部分细菌3天内即可发展为耐药， 临床治病3­4天后，应重新分离细菌做药敏试验

9.5感染部位与药代动力学因素 给药剂量与用药方式 ：时间依赖性、浓度依赖性、 抗生素后效应、特殊人群等因素。

9.6.感染原发灶 药敏试验仅报告细菌对药物的敏感性，但不同部位的感染，因根据药物浓度分布选择抗菌药物，药物剂型和生物利用度(纯品，商品)

10.是否能将所有的药都做药敏试验

10.1没有必要：通过耐药机制和标志性药物可以预测其他抗菌药物的敏感性，

抗生素的等效性：是指用一种相关抗生素的试验结果预测同类抗生素体内抗菌活性。此特性允许检测少数几种抗生素而不影响临床对其他抗生素的广泛选择，试验的药物代表一类 药，而不是一种药。

如对肠杆菌头孢噻吩与其他一代头孢具有等效性， 可用头孢噻吩结果预测其他一代头孢。 10.2.没有可能：不是所用药物都可以做药敏试验(需要药物在体外稳定，需要有操作标 准和解释标准)有些细菌对某类抗生素天然耐药， 则不需要做药敏试验 比如：嗜麦芽窄食单胞菌对碳青霉烯类天然耐药， 治疗首选复方新诺明。

11.鉴定结果明明写着四联球菌、 革兰氏阳性杆菌，为何没有药敏结果?

四联球菌为微球菌，一般不引起人体致病， 为非致病菌，故考虑污染可能。 药敏结果参照CLSI标准，目前革兰氏阳性菌没有参照标准，故暂不能做药敏试验， 若需治疗可参照阳性球菌用药。

12.药敏试验报告中MIC越小的抗菌药物效果越好?

感染菌对同一种药物的MIC越小，效果越好 ，不同种抗菌药物之间 MIC无可比性，目前很多仪器报告的是检测折点，而不是真正的MIC 四 对临床的要求

临床医生应为实验室提供有用的临床信息，以便实验室有针对性地对可能的病原体进行鉴定。 临床医生对药敏测定方法和微生物学知识有一定的了解，以更好地理解药敏试验报告中验报告中 S、I、R临床意义，以及体内、体外药敏不一致的现象。 增强特殊标本的微生物送检的意识，提高诊断的阳性率。

五 呼 吁

1.请尽量在早上送检标本 2.请正确留取痰标本

3.请正确填写标本部位及名称

4.血培养-感染性疾病的病原学诊断有效手段 5.个别特殊病历多沟通，

6.反馈抗生素疗效(药敏结果与临床疗效不符时 ) 7.科研合作

第三篇：微生物标本的采集和运送基本原则

一、盂县中医医院院微生物标本的采集和运

送基本原则

1.发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于70%。 2.尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3.标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4.标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。

5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子等，应标明标本种类，并立即送检。

6.盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。中段尿培养的标本应用专用的无菌尿标留取(在仓库领取)。静脉导管、胸腹水，脑脊液等到细菌室取无菌试管留取。 7.送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

二、常见医院微生物标本采集送检方法

1.血液与骨髓

① 通常采血部位为肘静脉。疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处

采取血标本。

② 采血部位的局部皮肤应严格消毒。将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。

③ 每次采血量成人5一10ml，婴幼儿l一5ml，培养基与血液之比以 10：1-5：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。

④ 怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。

⑤ 每例病人至少采血两次，间隔0.5-lh，以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。多次多部位采血可提高阳性率。

⑥ 对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml作增菌培养。 2.尿液

① 中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0.1%高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口;男性须翻转包皮冲洗，用0.1%新洁尔灭消毒尿道口.灭菌纱布擦干后收集标本10ml，0.5小时内送检。

② 导尿管导尿采样可减少污染。对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿

液。或消毒后解开接口，弃去导尿管前段尿液、留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。不可从集尿袋的下端管口留取标本。

③ 尿厌氧菌培养，或婴幼儿中段尿采集困难，或培养结果与病情不符时，可经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。

④ 送检标本以早晨第一次尿液为佳。

⑤ 室温下尿标本耽搁稍久，可致尿内细菌浓度明显增加而影响病原菌与污染菌的区分。不能立即送检者，可暂存4℃冰箱。 3.痰液

① 咳痰：清水反复漱口后用力咳嗽，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。痰量极少者可用45℃的l0%氯化钠溶液雾化吸入导痰。

② 对咳嗽乏力或昏迷病人，可用吸痰管经鼻腔或口腔抵达气管腔内吸引痰液。用纤维支气管镜可直接在病灶部位采集高浓度的感染病原菌，但不能完全避免咽喉部正常菌群污染。

③ 双侧肺部感染伴人工气道如气管切开或气管插管患者，可用吸痰管经人工气道插至肺支气管水平吸引痰液。 ④ 对重症、难治、或伴免疫抑制、或疑似厌氧菌引起的医院内肺部感染，可采用环甲膜穿刺经气管吸引(TTA)、经胸

壁穿刺肺吸引(LA)、经纤维支气管镜或人工气道作防污染双套管毛刷(PSB)或防污染支气管肺泡灌洗(PBAL)采集无口咽部菌群污染的痰液，进行感染病原学诊断。

⑤ 痰标本不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。如果室温下延搁数小时，定植于口咽部的非致病菌可呈过度生长，而肺炎球菌、葡萄球菌和流感杆菌检出率则明显下降。 4.伤口、烧伤创面与脓液

① 用无菌生理盐水擦洗病灶表面后，用无菌棉拭取病灶深部的脓液和分泌物，立即置无菌试管内送检。

② 对未破损的脓肿宜用碘酒、酒精消毒皮肤后，以无菌注射器抽取脓液送检：也可于切开排脓时用无菌棉拭子采样。 5.粪便

① 排便后，挑取有脓血、粘液部分的粪便约2—3g(液状粪便则取絮状物)，盛于灭菌广口瓶或蜡纸盒送检。用棉拭子挑取粪便插入Cnry—BLair运送培养基或PH7.0的磷酸盐甘油中送检，可提高病原菌检出率.

② 对不易获取粪便者或婴幼儿，可用直肠拭于(又称肛拭)采集。将拭子前端用无菌甘油水湿润，然后插入肛门约4—5cm(幼儿约2—3cm)处，轻轻旋转擦取直肠表面粘液后退出置运送培养基内送检。 6.咽拭、口腔拭子

① 病人清水嗽口后.由检查者将其舌外拉使悬雍垂尽可能

向外牵引，棉拭子越过舌根到咽后壁或悬雍垂的后侧，反复擦拭数次，插入运送培养基。棉拭子应避免触及舌、口腔粘膜和唾液。

② 对化脓性扁桃体炎或口腔念珠菌病，用棉拭子在病灶部位擦拭数次即可。

7.浆膜腔积液、脑脊液

① 浆膜腔积液包括胸水、腹水、心包液、关节液和鞘膜液等.以严格无菌操作抽取数毫升液体置无菌试管或小瓶送检。对易自凝的标本可添加抗凝剂(抗凝剂需无菌)。 ② 严格无菌操作下采取脑脊液数毫升置于无菌试管。标本采集后应立即送检，以防细菌死亡。疑似有脑膜炎奈瑟菌时，应注意保暖，不可置冰箱保存。 8.生殖道标本

① 根据不同感染种类和病变特征采集不同的标本。采集尿道标本时，应先用生理盐水局部清洗，以无菌棉拭子插入尿道口 l一2cm停留十余秒钟。轻轻旋转拭子后退出. ② 对外阴部糜烂、溃疡者，经生理盐水清洗后用棉拭子擦取病灶边缘的分泌物。

③ 阴道和官颈口分泌物须在窥阴器下用长棉拭子采集。 ④ 子宫内分泌物需用无菌导管抽取.导管外套一层保护膜，插入子宫后再刺穿该膜予负压吸引，可减少阴道菌群污染。

⑤ 女性盆腔脓肿，应在阴道局部消毒后，由直肠子宫凹陷处进针抽取。

⑥ 前列腺液需进行前列腺按摩获取。 9.组织标本

① 表浅的感染组织和各种窦道标本可用棉签擦拭、小刀刮取、穿刺抽吸或手术切除。对窦道和痰管应深部刮取管壁组织。

② 深部组织标本可经皮肤穿刺采集或手术切取。标本置无菌容器并加少量无菌生理盐水以保湿度，或置肉汤增菌液，或置血平皿送检。

③ 尸检标本应于死后20h内采取，以防肠道等菌群侵入引起污染。

④ 作病原体分离的组织标本，不可用福尔马林固定。疑有污染的较大组织块，可用烧红的烙铁烧灼其表面或置沸水中5—10秒钟使表面变白消除污染后，再用无菌器械切开组织，取中央部位组织送检。 10.静脉导管

从病人体内拔出静脉插管，用无菌技术剪取5cm长导管尖端。。不能作床旁接种者，导管置含有少量生理盐水的无菌试管内立即送检。实验室接到标本后马上把导管置于血平皿上作滚动涂布接种，也可将剪下的导管置肉汤增菌液或置于血培养液内，但不能区分导管感染菌与少量的定植菌。

三.内毒素检查

1、标本采集

【标本采集前注意事项】

不需特殊准备，最好空腹采血。周一至周五上午10点半之前送检。节假日不检测。 【标本类型】

血浆(肝素抗凝)、脑脊液、胸水、腹水 【标本容器】

无热源试管(血液和胸、腹水需肝素抗凝)，用时到检验科四楼细菌室领取，原则上不备管。 【样本条码粘贴要求】

打印清晰的条码纵向粘贴在试管上，上下均应留有空间，具体以覆盖住原标签为准。病人的姓名端向上，条码区的任何区域不得被覆盖，注意不要在条码帖上涂写，保持条码的完整和清晰。 【标本采集方法】

血液标本：以无菌方法采取患者空腹静脉血液约2ml，注入肝素抗凝无热源试管，充分混匀，避免凝集。

脑脊液、胸水、腹水：以无菌方法留取相应标本，于无热源试管中。胸、腹水置于肝素抗凝管。

尿液：因尿液标本在留取时易污染，暂不做尿液标本，除非为穿刺尿标本。

【标本的送检地点】

检验科微生物室(裙楼4楼)。

三、临床意义

健康人群生物参考区间: 10 pg/ml以下。 1 革兰氏阴性菌败血症的诊断。

2 能引起细菌和毒素入血的局部感染，如呼吸道感染，脑膜炎、髓膜炎、消化道、肾脏及腹腔感染等疾病时，血中内毒素水平也与临床具有较好的一致性。

3 尿道感染：尿道感染大部分由革兰氏阴性菌引起，因此检测尿液中的内毒素水平可快速准确的对病人作出诊断，及时治疗。

4 肠源性内毒素血症:肝脏疾病和急性坏死性胰腺炎时可引起肠源性内毒素血症。

四、1-3-β-D-葡聚糖检查 【标本采集前注意事项】

不需特殊准备，最好空腹采血。周一至周五上午10点半之前送检。节假日不检测。 【标本类型】

血浆(肝素抗凝)、脑脊液、胸水、腹水 【标本容器】

真空采血管(血液和胸、腹水需肝素抗凝) 【样本条码粘贴要求】

打印清晰的条码纵向粘贴在试管上，上下均应留有空间，具体以覆盖住原标签为准。病人的姓名端向上，条码区的任何区域不得被覆盖，注意不要在条码帖上涂写，保持条码的完整和清晰。 【标本采集】

血液标本：以无菌方法采取患者空腹静脉血液约2ml，注入肝素抗凝试管(黑盖或绿盖)，充分混匀，避免凝集。 脑脊液、胸水、腹水：以无菌方法留取相应标本于无菌试管中。胸、腹水应用肝素抗凝。

尿液：无菌方法留取中段尿标本，避免阴道分泌物的污染。 【血液标本的送检地点】 检验科微生物室(裙楼4楼)。

三、临床意义

健康人群生物参考区间: 10 pg/ml以下。

第四篇：新进人员社保信息采集方法

一、

二、 登录网址：http://wsbs.jsychrss.gov.cn/sbk/login.php 选择个人登录

三、 人员信息采集

注意：照片不用上传，只要保证身份证号正确填写即可!

四、确认完毕后，一定要点击“提交”按钮，确定信息为“已确认”状态!

第五篇：标本采集方法及注意事项

临床常用检验标本的采集方法及注意事项

医学检验又称临床检验，是指通过感官观察，试剂反应，仪器分析等，对离体标本如体液，分泌物，排泄物和脱落物进行的检验。它为临床诊断，病情判定，疗效观察，预后评估等提出实验数据。

检验结果的准确与否，与病人采样前的状态，准备，取样方法和标本携带等因素有关。临床护士必须掌握各种检验标本采集的方法，时间，饮食的要求，药物的影响，标本的存放温度及采集标本时的体位等状况。为此，护士要有对病人负责的精神，科学的工作态度，严谨的工作作风，一丝不苟地做好临床标本的采集工作，并根据本地区或本医院所提供的正常参考值及临床表现进行结果判断，为治疗护理提供参考依据。 各种标本采集的注意事项的重要意义

护士承担着大多数标本的采集任务，由于标本的来源，性质，采集方式不同，将直接影响临床检验结果的准确性。因此，护士必须熟悉自己所在单位有关实验室的情况，明确采集标本的要求，以保证标本质量，为临床诊断提供可靠依据。 1 血标本采集方法及注意事项

采血时机：提前向病人讲解抽血化验检查的目的，方法和采集标本的时机，解除病人的恐惧或焦虑，安慰病人，使之处于安定状态，避免因精神-体液变化影响检验的结果。根据检验的不同要求，采血的时间也不同：

空腹抽血适宜作血糖，血脂，肝功能，肾功能，电解质等生化检验。禁食时间约12小时，时间过长易引起低血糖虚脱。

餐后2小时，上午8-9时抽血，可做血液内激素测定及餐后血糖测定。 急性心肌梗死发病后，16-24小时天门冬氨酸氨基转移酶(AST)，肌酸激酶(CK)达峰值;30-60小时乳酸脱氢酶(LDH)达峰值,维持3-6d。

急性胰腺炎发作后2-12小时血清淀粉酶开始上升，12-72小时达高峰，4小时左右恢复正常。 留取血细菌培养标本时，应在病人体温达38.5度以上时抽取血标本，阳性率较高。 采血部位

动脉采血：常用采血部位股动脉，桡动脉，足背动脉等。由于动脉压力高，危险性较大，故采血后按压穿刺点5-10分钟。

静脉采血：是最常用的采血方法，可选择的表浅静脉多，要求护士必须严格无菌操作，避免感染，可选择较大的静脉穿刺，争取一次操作成功。

毛细血管采血：只需很小量标本，多在手指，足趾或足跟等部位采血，如全血细胞计数，快速血糖，血脂等检验，或婴幼儿。

采血器材：a,注射器，瓶塞，玻璃或塑料试管，防腐剂，抗凝剂，标签等。B，真空采血器：以不同彩色标记各种试管盖，用于不同实验。(我院常用的真空采血管规格及标志)

添加剂：一般分防腐剂和抗凝剂二类。常用抗凝剂有乙二胺四乙酸(EDTA)二甲抗凝，枸橼酸盐，草酸钠(钾)均系与钙作用而抗凝;肝素则抑制凝血酶活性而有抗凝作用，用于血PH，血气，内分泌激素，氨基酸，药物浓度，6-磷酸葡萄糖，染色体等检查。用抗凝试管时，每管的抗凝剂与采血最大量有关，要求与血液充分混匀，不够可致血液凝固。 标本的类型：血标本有三类：即全血，血浆，血清。 全血：用抗凝剂。

血清：不用抗凝剂。常用于多种生化分析，如蛋白质，脂类，无机盐，酶，肝功能，肾功能检查。

血浆：有多种抗凝剂。用于红细胞积数，红细胞比容，血沉，血型鉴定，血红蛋白电泳，交叉配血等。 操作重点

认真查对病人姓名，检查项目，留取标本要求。

严格无菌操作：采血前，常规消毒皮肤，使用一次性注射器或真空采血器。采血后。必须仔细检查病人，有无继续出血，血肿等情况，特别是昏迷或半昏迷病人。必要时要找医生处理。 止血带的应用，一般止血带捆扎不要超过1分钟，时间过长，将影响结果。 当病人进行输液治疗时。切忌在有静脉穿刺针的肢体上采集血标本，以免影响检验的真实结果。

注射器采血后。应先取下针头后再沿试管壁将血液缓慢地注入试管中。 操作完毕按要求处理注射器等污染物品。 有抗凝剂的血标本要充分摇匀，防止凝血。 尿标本采集方法及注意事项 方法：

导尿法：用导尿管导尿，取10—15毫升尿业盛于无菌容器中送检。

中段尿采集法：是临床上采用最多的方法。女性病人应以肥皂水或1：1000新洁尔灭或其它消毒液等冲洗外阴部及尿道口;男性病人应翻转包皮冲洗，用1：1000新洁尔灭消毒尿道口，再用灭菌纱布擦干，让病人排尿，弃去前段尿，收集中段尿10-20毫升于无菌容器内，立即加盖送检。

肾盂尿采集法：为确定菌尿是否来自肾脏，可用导尿管采集肾盂尿，一般应请泌尿科医生协助进行。

膀胱穿刺尿采集法：将病人耻骨上皮肤消毒后，以无菌注射器做膀胱穿刺。取得尿液后，针头插于橡皮塞上送检。只要用于厌氧菌的培养。

集尿法：做结核分枝杆菌培养时，可用一洁净容器，留取24小时尿液，取沉渣10—15毫升盛于清洁瓶内送检。 尿标本采集注意事项：

尿常规，妊娠实验等最好留取清晨第一次尿液为宜，因为较浓缩，条件恒定，便于对比，故应向病人详细说明。急诊病人应随时留取标本。 尿液不能及时送检应适当防腐，防腐剂的选择取决于要分析的物质所采用的方法。收集期间，标本应放入冰箱或阴凉处，以免细菌繁殖，细胞溶解等。收集完毕，要立即送到实验室(一般夏季1小时以内，冬季2小时内完成检验)。

标签和申请单上，应写明标本收集的年月日，核对姓名。 尿标本应避免经血，白带，精液，粪便等混入。 尿液检验常用项目送检要求：

一般形状检查:收集24小时尿按每升尿液加5毫升甲苯防腐，送检。参考值健康成人：1.0—1.5L/24h 小儿：按体重(Kg)算，较成人多3-4倍。 尿色检验尿透明度尿味检验：采集新鲜尿液，及时送检。

尿酸碱度(尿ph)尿比重(SG)显微镜检查尿葡萄糖(GLU)尿酮体(KET)尿胆原(UBG)尿胆红素(BIL)尿沉渣检查:晨起空腹，患者清洗外阴后，自采中段尿液10ml，1h 内送检。 尿蛋白定量(PRO):：收集24h尿按每升尿液加5ml甲苯防腐，送检。 尿本周蛋白定性(B-JP) 乳糜尿：取采集新鲜尿液10ml于干净容器中送检。 尿隐血试验肌红蛋白定性试验(Mb)：采集新鲜尿液5ml于干净试管中送检。

尿爱迪记数(Addis)要求:晚上8时排尿弃去，以后12小时尿液(包括次晨8时尿液)全部收集于干净容器中送检。

尿妊娠试验：晨尿或即时新鲜尿液5ml送检。 大便标本的采集方法及注意事项

自然排便采集法挑取有脓血，黏液部分的大便，液状大便取絮状物，盛于灭菌的广口瓶或蜡纸盒中，或者置于保存液，增菌液中送检。

直肠拭子方法：将拭子前端用无菌甘油盐水湿润，插入肛门4-5厘米(幼儿2-3厘米)处，轻轻旋转，取直肠表面黏液后取出，放入无菌试管或保存液中送检。

如不能立即送检应放入卡里-布来尔(Cary-Blair)运送培养基或PH值7.0的磷酸甘油(0.033mol/L磷酸盐缓冲液与等体积的甘油混合)中运送和保存。 粪便标本采集的注意事项

粪便标本的采集容器可用不吸水的纸盒，要求清洁，干燥。

粪便的寄生虫检查，需多次留取标本。收集蛲虫用透明纸带方法，较肛门拭子为优。收集标本后，要迅速送于实验室。

标本要新鲜，且不可混入尿液。其留取量约5g(常为指头大小)。

作大便潜血试验前3天嘱病人禁食肉类食品，铁剂及大量绿色蔬菜。 检查血吸虫毛蚴孵化，粪便量不得少于30克，标本要新鲜。

阿米巴及其他原虫之滋养体检查，从排出粪便到检查完毕不宜超过30分钟。冬天需采取保暖措施，迅速送检。培养阿米巴所用分辩量须在2克以上。 浓缩查虫卵，包囊，粪便量宜在20克以上。 痰液及支气管分泌物标本的采集

自然咯痰法：用清水反复漱口后用力自气管深部咳出第一口痰，置于无菌容器中尽快送检。 气管镜采集法：用气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或者用支气管刷直接取得，该法病人耐受性较差。

小儿取痰法：用压舌板向后压舌，用棉拭深入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部和气管分泌物，粘在棉拭子上，取出检查。

气管穿刺法：通过气管穿刺取得的痰液主要用于厌氧培养。

胃内采痰法：结核病人，尤其是婴幼儿病人不会咳痰，且有时把痰误咽入胃内，可采胃内容物做结核培养，其阳性率比咯痰法高10%左右。该方法用于清晨空腹是，将胃管插入胃内，用注射器抽取胃液。 痰标本采集注意事项：

病人应在护士指导下，早餐前漱口后，用力咳出气管深处的呼吸道分泌物留作标本。查找结核杆菌或细菌培养需连续留取痰标本。。

新鲜痰液作标本，不可含有唾液及鼻咽部分泌物。 小儿痰液收集困难时，可用棉拭子刮取标本。 体液及排泄物标本采集注意事项： 脑脊液：

(一)标本的采集：以无菌方法采取脑脊液3-5毫升，盛于无菌试管或小瓶中送检。

(二)注意事项：1)标本收集好后立即送检，标本量每次至少1-2毫升。 2)细胞计数管应避免标本凝固，遇高蛋白标本时，可用草酸钾或EDTA抗凝。 穿刺液标本的采集方法

由临床医生行穿刺术抽取，在病人用药之前或停药1-2天后进行。胸水腹水抽5-10毫升。心包液关节液抽1-5毫升。将采集物盛于含有或不含抗凝剂的无菌试管或小瓶内，充分混匀后，立即送检或置于4度的冰箱保存。 胸膜腔积液的注意事项：

穿刺抽取胸水腹水等标本后，要及时送检，以防细胞变性或细菌破坏溶解。 标本采集量，每次5-10毫升，如需测比重的标本应在60毫升以上。

为防止凝固，加入EDTA或草酸钾抗凝，每0。1毫升可抗凝6毫升浆膜积液。 生殖道标本的采集方法及注意事项 分泌物标本：尿道及尿道口外阴部糜烂面及溃疡标本应先用生理盐水清洗局部后，再用无菌棉拭子采集;阴道及宫颈口分泌物则在窥阴器下操作，淋菌双球菌用用革兰染色油镜镜检，阴道滴虫用盐水涂片检查;前列腺液则需进行前列腺按摩获取。 穿刺液标本：生殖器庖疹消毒后用无菌皮试注射器刺入采取疱疹液;女性盆腔脓肿则在阴道内部消毒后由直肠子宫凹陷处进针抽取。 细菌培养标本采集方法及注意事项 采集方法：

血液骨髓的细菌培养：a普通培养：在严格无菌操作下抽取静脉血3-5毫升(骨髓液1-2毫升)接种入30-50毫升的培养基中，立即放入35度温箱中培养。B感染性心内膜炎患者血培养：采血10毫升培养。C布鲁杆菌培养：采血10毫升接种入肝浸液培养基中培养。 各种体液的细菌培养;取各种体液如胸水心包液关节液鞘膜积液等标本5-10毫升，至少1毫升，置无菌试管内立即送检。

脑脊液的细菌培养：经穿刺以无菌方式收集脑脊液2毫升以上，置无菌试管中立即送检。 粪便细菌培养：采取新鲜粪便的脓血黏液部分，或乙状结肠镜时取脓性分泌物，放入清洁容器，立即送检。

尿液细菌培养：按中段尿留取法留取尿液0.01毫升涂于血琼脂培养皿。

痰脓及各种分泌物的细菌培养：嘱患者早晨起床后以清洁水漱口，然后由气管内咳痰数口，于无菌试管内或培养皿中，用无菌生理盐水洗涤后接种。

厌氧菌培养：用注射器抽取的深部脓肿胸水腹水脑脊液胆汁标本，抽取后立即排出空气，再于针头上插无菌橡皮塞，立即送检。 二注意事项

送检标本，必须使用清洁无菌试管或其他容器。

采集标本应严格执行无菌操作，防止细菌感染。慎防标本玷污容器外部，严防容器翻倒或破裂而导致污染及传播。

标本中不得加入防腐抗菌药物或其他药物。血液脑脊液骨髓胸水腹水等标本，应在使用抗菌药物前采取。

对特殊细菌的检查应注明，需做药敏试验者注明抗菌药物名称。细菌培养后如需保存病种，送检时应注明。

标本一经采集，应尽快送检。