核糖及其衍生物脱氧核糖是核酸的重要组成部分, 也是某些维生素及辅酶的组分。D-核糖及其衍生物以呋喃型广泛存在于天然化合物中, 而D-核糖的对映体L-核糖在自然界不存在, 一般只能通过合成的方法得到。核糖核苷及脱氧核糖核苷是一类重要的抗病毒剂, 近年来L-核糖及衍生物在医药中的应用报道日益增加[1,2]。其原因是L-核糖核苷具有显著的抗病毒活性, 而毒性却比D-核糖核苷低。一些L-核糖及衍生物2-脱氧-L-核糖与腺嘌呤等有机碱形成的核苷衍生物在癌症、乙肝等疾病的治疗方面具有极大的应用潜力, 许多化合物正处于开发及应用中, L-核糖部分修饰的低聚核苷酸还可以用来设计高效抗过敏药物分子。因此L-核糖及衍生物脱氧核糖的合成, 是一个在有机合成中富有挑战性的课题, 该方面的开发与研究十分活跃, 已报道的L-核糖的合成方法有化学合成法与微生物合成法。化学合成法研究较早, 近年来也有较多的报导, 微生物合成法近年来也引起人们极大的兴趣。
微生物法是合成L-核糖及其它碳水化合物的新途径, 近年来引起人们的广泛兴趣[3,4]。原料葡萄糖在微生物的作用下发酵, 转化为核糖醇, 含有核糖醇的发酵液, 又通过弗式葡萄糖杆菌的作用氧化为L-核酮糖, L-核酮糖溶液再通过凝胶纤维单胞菌的作用下, 异构化为L-核糖, 粗产品溶液蒸发浓缩, 采用阳离子交换树脂处理, 再经脱盐, 脱色和结晶, 得到L-核糖, 一般产品纯度可达99%, 分离回收率为56%。本文在上述工艺的基础上, 添加钙型色谱树脂柱GSPC-106Ca色谱分离工序, 对L-核糖进一步分离提纯, 重点考察不同的因素及操作条件对L-核糖分离纯化的影响。
一、实验试剂与方法
1. 实验试剂
L-核糖超滤溶液 (生产制备) 、钙型色谱树脂GSPC-106Ca、去离子水、超纯水
2. 仪器
岛津LC-10A液相色谱仪、超声波清洗器、超纯水机、有夹层的玻璃柱、电子分析天平、量筒、恒温水浴锅
二、实验方法
本文选择的离子交换柱为一根长2m, 内径4cm的带有夹套的玻璃柱, 柱内填充新购钙型色谱树脂GSPC-106Ca, L-核糖超滤溶液从柱子上方进入, 然后用去离子水洗脱, 柱子下方用量筒每隔100m L取样检测其纯度与含量。
树脂体积为2000m L, 我们调节不同的柱温 (40℃、50℃、60℃、70℃) 、不同的进样量 (100g、150g、200g、250g) , 不同的进样浓度 (40%、45%、50%、60%) , 不同的洗脱速度 (10m L/min、20m L/min、30m L/min) , 用去离子水洗涤, 收集L-核糖纯度95%以上的糖液。
正交实验设计方案
为了确立最佳分离条件, 首先进行几个基本分离条件的实验, 确立了对分离回收率影响较大的几个因素, 见表1。
三、正交实验结果及讨论
1. 正交实验结果
通过上述一系列单因素实验结果, 我们设计了L9 (34) 的正交试验, 最终根据收率确定最佳工艺条件, 其因素水平见表2。
结论
从表中可以看到四个因素对收率的影响主次为:流速>进样浓度>进样量>温度;最佳条件:流速10m L/min, 温度50℃, 进样量150g, 进样浓度40%,
实验表明, 在最佳实验条件下, L-核糖的回收率最高到达56.84%, 纯度99.6%。
摘要:L-核糖经超滤后, 用钙型色谱树脂ZGSPC-106Ca对超滤液进行柱色谱分离提纯, L-核糖溶液的纯度和含量均通过高效液相色谱仪测定。通过大量实验, 确定最佳分离条件:流速10mL/min, 温度40℃, 进样量150g, 浓度40%。最佳条件下L-核糖的分离回收率达到56.84%。
关键词:L-核糖,正交试验法,柱色谱分离,回收
参考文献
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